Ацетат-целлюлозная мембрана
Cтраница 2
Белки, нанесенные на смоченную буферным раствором ацетат-целлюлозную мембрану, мигрируют в электрическом поле в соответствии с общим зарядом их молекул. [16]
Невозможность обессоливания растворов, содержащих: Ч фенол или фенолят натрия, объясняется нестойкостью ацетат-целлюлозных мембран в среде фенола и фенолята натрия. [17]
Раствор белкового антигена Г и специфическая иммунная сыворотка, диффундируя навстречу друг другу на ацетат-целлюлозной мембране, в месте встречи образуют полосы преципитаций. [18]
На рис. 1 - 35, в, г и 1 - 36 представлены зависимости G и ф ацетат-целлюлозных мембран от числа оборотов мешалки для растворов ряда солей и глицерина. [19]
Их разделение и идентификация осуществляются обычно на бумаге или ацетат-целлюлозной мембране при рН 6 5 в фосфатном или како-дилатном буфере, хотя отличия в электрофоретической подвижности между некоторыми из них очень невелики. [20]
Их разделение и идентификация осуществляются обычно на бумаге или ацетат-целлюлозной мембране при рН 6 5 в фосфатном или како-дилатном буфере, хотя отличия в электрофоретической подвижности между некоторыми из них очень невелики. [21]
Разновидностью динамических мембран являются так называемые жидкие мембраны. При исследовании разделения растворов неорганических солей с добавками поверхностно-активных веществ ( ПАВ) было обнаружено [83] изменение характеристик ацетат-целлюлозных мембран ( см. также Приложения XII-XIV) по сравнению с растворами солей, не содержащих таких добавок. Оказалось, что катионогенные и неионогенные ПАВ, присутствующие в микроколичествах в исходном растворе, значительно повышают селективность мембраны. [23]
Причиной этого является образование на поверхности раздела мембрана - раствор слоя адсорбированных молекул ПАВ. Этот слой увеличивает сопротивление прохождению как воды, так и соли вплоть до достижения критической концентрации мицеллообразования, при которой нижележащая ацетат-целлюлозная мембрана полностью покрыта молекулами ПАВ. Инфракрасные спектры ПАВ свидетельствуют о сильном взаимодействии между гидрофильными группами эффективной добавки и молекулами воды. [25]
Это значит, что, если через эту мембрану фильтровать тот же раствор под большим давлением ( по величине не меньшим, чем абсолютная величина отрицательного давления в мембране), то концентрация компонентов должна уменьшаться в 2 - 3 раза. Такие опыты с раствором метанола ( 300 мг / л) были проведены на целлофановых мембранах при давлении 9 8 - 14 7 МН / м2 ( 100 - 150 кгс / см2), и не было обнаружено никакого понижения концентрации. Даже наилучшие ацетат-целлюлозные мембраны понижают концентрацию этих компонентов менее чем в 3 раза. [26]
Приведенные данные показывают, что во всех случаях активность воды после очистки снижается на 2 - 3 порядка. Последующие испытания, проведенные на реальной сбросной воде, подтвердили высокую эффективность обратно-осмотической очистки радиоактивных отходов. В частности, применяя ацетат-целлюлозные мембраны, удается на два порядка снизить активность сбросных вод и достигнуть 100-кратного уменьшения их объема. [27]
Ацетат-целлюлозная мембрана, по-видимому - очень хорошая поддерживающая среда, уже нашедшая благодаря ряду достоинств широкое применение. Выше мы отмечали, что приготовление крахмального и агарового гелей-довольно трудоемкая операция, осложняющая метод. В то же время способы предварительной обработки ацетат-целлюлозной мембраны почти так же просты, как и в случае с фильтровальной бумагой. При этом разделение белков происходит лучше и быстрее, а для анализа достаточно 5 - 1000 мкг белка, растворенного в объеме 0 1 - 10 мкл. Как белки, так и гликопро-теиды очень хорошо окрашиваются на ацетат-целлюлозной мембране, поэтому она является прекрасной поддерживающей средой с точки зрения количественной оценки этих соединений. Электрофорез на ацетат-целлюлозной мембране позволяет получить больше белковых фракций сыворотки крови, чем электрофорез на бумаге, но меньше, чем электрофорез в крахмальном геле. С помощью электрофореза на ацетат-целлюлозной мембране можно определять весьма малые количества индивицуальных белков, благодаря чему он очень подходит для анализа гомогенности выделенного нативного белка. Ацетат-целлюлозные мембраны могут быть использованы также в опытах по иммунодиффузии, что является еще одним достоинством этого метода электрофореза. [28]
В последние годы получены мембраны, которые пригодны для работы при значительно больших температурах ( см. стр. Для выбора оптимальных условий их эксплуатации становится необходимым учет влияния температуры на характеристики разделения. Анализ данных по влиянию температуры на проницаемость и селективность ацетат-целлюлозных мембран ( рис. IV-10) показывает, что вначале с повышением температуры проницаемость увеличивается обратно пропорционально вязкости жидкости. Затем кривая Gf ( t) начинает отклоняться от этой закономерности, проницаемость уменьшается и при 85 С падает до нуля. Этот эффект можно объяснить только усадкой и полным стягиванием пор мембраны в процессе структурирования полимера, который заканчивается при указанной температуре, что подтверждается, в частности, необратимым изменением свойств этих мембран после работы при температуре выше 50 С. Селективность ацетатцеллюлозных мембран при повышении температуры сначала возрастает, затем остается примерно постоянной. [29]
Метод зонального электрофореза имеет и некоторые недостатки. Между исследуемыми белками и поддерживающей средой возможны нежелательные взаимодействия, в результате которых часть белка адсорбируется в среде. Адсорбция происходит сильнее всего на бумаге, менее выражена на ацетат-целлюлозной мембране и практически ничтожна в агаровом геле. [30]
Страницы: 1 2 3