Cтраница 2
Щелочной гидролиз до мононуклеотидов применяется для определения нуклеотидного состава РНК. [16]
Все перечисленные изомеры мононуклеотидов хорошо известны. [17]
В присутствии смеси соответствующих мононуклеотидов свободные концы синтетических ДНК строк б, б, в и в могут дополняться компле-ментирующими нуклеотидами, которые далее под действием полимеразы свяжутся в цепь. [18]
Щелочной гидролиз РНК до мононуклеотидов, хотя он и является одним из самых распространенных методов определения нуклеотидного состава РНК и часто применяется при установлении нуклеотидной последовательности и определении концевых звеньев в олигонуклеотидах ( см. стр. В процессе щелочного гидролиза РНК происходит существенное дезаминирование производных цитозина78 и в еще большей степени З - М - метилцитозина, разрушение производных 5 6-дигидроурацила ( см. стр. N-метиладенина в б-э / сзо - N-метиладенины ( см. стр. Поэтому для анализа содержания этих соединений в составе РНК щелочной гидролиз непригоден. [19]
В отношении дальнейшей судьбы мононуклеотидов существует два предположения. Считают, что мононуклеотиды в кишечнике под действием неспецифических фосфатаз ( кислой и щелочной), которые гидролизируют фосфоэфирную связь мононуклеотида ( нуклеотидазное действие), расщепляются с образованием нуклеозидов и фосфорной кислоты и в таком виде всасываются. Согласно второму предположению, мононуклеотиды всасываются, а распад их происходит в клетках слизистой оболочки кишечника. Имеются также доказательства существования в стенке кишечника нуклеотидаз, катализирующих гидролитический распад мононуклеотидов. [20]
Дефосфорилиронание нуклеиновых кислот, мононуклеотидов и казеина гелями гидроокисей лантана и церия. [21]
Дефосфорилирование нуклеиновых кислот, мононуклеотидов и казеина гелями гидроокисей лантана и церия. [22]
Экзонуклеазы осуществляют ступенчатое отшепление мононуклеотидов от конца полинуклео-тидной цепи. [23]
В отношении дальнейшей судьбы мононуклеотидов в кишечнике существует два предположения. Во-первых, мононуклеотиды расщепляются под действием неспецифических фосфатаз ( кислой и щелочной), которые гидролизу-ют фосфоэфирную связь ( нуклеотидазное действие) с образованием нукле-озидов и фосфорной кислоты, и в таком виде всасываются. Второе предположение заключается в том, что мононуклеотиды всасываются и распад их осуществляется в клетках слизистой оболочки кишечника. Имеются также доказательства существования в стенке кишечника нуклеотидаз, катализирующих гидролитический распад мононуклеотидов. Дальнейший распад образовавшихся нуклеозидов осуществляется внутри клеток слизистой преимущественно фосфорилитическим, а не гидролитическим путем. [24]
![]() |
Частичный гидролиз фосфодиэфирных связей в гомополинуклеотидах при рН 1059. [25] |
При гидролизе РНК до мононуклеотидов различия в скоростях гидролиза фосфодиэфирных связей в значительной степени нивелированы, однако и в этом случае проявляется большая устойчивость фосфодиэфирной связи у адениновых звеньев. [26]
При переходе от нуклеозидов и мононуклеотидов к полинуклео-тидам скорость реакции с монозамещенными азотистыми ипри-тами увеличивается. Так, алкилирование остатков аденозина в полиадениловой кислоте протекает приблизительно в 2 5 раза быстрее, чем в нуклеозиде. При проведении реакции с денатурированной ДНК образуются приблизительно равные количества продуктов алкилирования гуанина и аденина, в случае же нативного двухцепочечного полимера первоначально алкилируется только гуанин. Причины столь резкого повышения реакционной способности при переходе от мономера к полимеру не ясны. Этот эффект может возникать за счет локального повышения концентрации реагента вследствие полианионных свойств ДНК или он может быть связан с изменением электронных свойств остатка основания за счет межплоскостных взаимодействий. [27]
Статья Маркхэма Хроматография на бумаге мононуклеотидов и олигонуклеотидов [1] была опубликована более 10 лет назад, однако она до сих пор не утратила своего значения. Поэтому мы рекомендуем читателю, приступающему к изучению нашей работы, либо предварительно ознакомиться со статьей Маркхэма, либо пользоваться обеими работами одновременно. Название данной статьи предполагает некоторые ограничения, которые оправданы только исторически. [28]
![]() |
На - модель вторичной структуры нуклеиновой кислоты. 116 - поперечный разрез модели вторичной структуры ( по Ф. Крику. [29] |
Первичную структуру здесь образуют цепочки из мононуклеотидов. [30]