Лабораторная популяция

Cтраница 1

Лабораторные популяции насекомых или промышленные выкормки тутового шелкопряда следует приравнивать к фазе максимума градации в развитии популяции. [1]

Утида [2151] изучал опытные лабораторные популяции, где два вида паразитов конкурировали в отношении одного хозяина, и сравнивал полученные результаты с результатами, полученными, когда каждый вид паразитов действовал отдельно. Нужно отметить, что его результаты и выводы основаны на относительном проценте зараженных особей, установленном во всех вариантах только для одного поколения, и поэтому не характеризуют популяции в равновесном состоянии и, следовательно, их приложимость к полевым условиям весьма ограничена. [2]

В нашу страну лабораторная популяция хищного клеща фитосей-улюса была завезена в 1963 г. из Канады. Однако методы использования хищника на других растениях разработаны недостаточно. [3]

Самка фитосейулюса, питающаяся паутинным клещом. На поверхности листа видны яйца вредителя ( сильно увеличено. [4]

В нашу страну лабораторная популяция хищного клеща фитосейулюса была завезена в 1963 г. из Канады. [5]

Значительные и часто нежелательные изменения лабораторной популяции насекомых происходят под влиянием условий воспитания. Действие повышенной плотности популяции, интенсивный отбор, особенно в начальный период разведения, тенденция к диапаузе, возникающая при непрерывном развитии культуры, могут в значительной степени влиять на качество получаемого материала. Автор указывает, что эти изменения необходимо учитывать при выборе метода использования энтомофагов и при разработке программы их массового разведения. [6]

После подсыхания жидкости в стаканчики подсаживают по 30 самок тлей лабораторной популяции. Эффект действия препаратов определяется через 24 ч путем учета погибших тлей. [7]

Вместе с тем большую роль могло играть и качество именно лабораторной популяции паразитов, па которую в значительной степени влияли условия воспитания. [8]

Стандартный корм взрослых мух был выбран потому, что он уже более 15 лет используется для поддержания лабораторных популяций комнатных мух и мухи предпочитают его всем другим рационам. Параллельные исследования с сахаром, обработанным хемостерилизатором, необходимы, потому что белковая основа стандартного корма может оказывать вредное влияние на некоторые потенциальные хемостерилизаторы. В этих испытаниях обработанный корм, содержащий 1 0 % испытуемого вещества и соответствующее количество воды, вводится в садки с одной сотней молодых мух обоего пола. Садки со 100 мухами с сахаром или кормом без потенциального хемостерилизатора служат контролем. Через 3 дня мух в каждом садке осматривают для определения возможной токсичности химиката, а в садки, где был только обработанный сахар с хемостерилизатором, добавляют необработанный корм, который служит источником белка для развития яиц в яичниках самок. Когда мухи достигнут 6 - 7-дневного возраста, в садки помещают влажный личиночный субстрат для откладки в него яиц. Через 4 - 6 часов субстрат для откладки яиц удаляют, погружают в воду и размешивают для отделения яиц. Пробу из 100 всплывших яиц переносят на кусок влажной черной ткани, которую помещают на среду для развития личинок в маленьком садке. Если яйца не были отложены, то субстрат для откладки яиц предлагается мухам 5 -раз с 1 - 2-дневными перерывами. После 24-часового выдерживания отложенных яиц на питательной среде для личинок определяют процент отрождения. Личинкам позволяют перебраться с ткани на среду и примерно через неделю после откладки яиц производят подсчет куколок, чтобы определить число окуклившихся личинок; степень стерильности определяют по числу куколок, полученных из 100 яиц. Сухость и загрязненность кормовой среды могут вызвать гибель личинок и, следовательно, уменьшение числа куколок, но параллельный контроль в необработанном садке с такой же средой обычно может выявить это обстоятельство. Неспособность самок к откладке яиц также служит критерием для оценки потенциального хемостерилизатора. [9]

При характеристике популяций микроорганизмов в активном иле или биопленке используют количество особей в 1 см3 жидкости, а лабораторные популяции оценивают в специальных учетных приборах, например в камерах Тома. Иногда плотность популяции выражают величиной биомассы на единицу субстрата. [10]

При длительном разведении насекомые настолько изменяются, что иногда бывают непригодны для выпуска в биотопы. В связи с этим приходится периодически обновлять лабораторные популяции. Иногда насекомые, взятые из природной популяции, вначале не откладывают яйца на искусственную среду и только после развития ряда поколений в лаборатории начинают откладывать яйца. Поэтому работе по подбору нужных рас и их воспитанию необходимо уделять большое внимание. [11]

Более того, нет никаких оснований полагать, будто генетическая структура тех видов, которые все эти переселения все-та. Мы знаем, например, что при искусственном отборе на холодоустойчивость в лабораторных популяциях как растений, так и животных можно добиться очень быстрых сдвигов. [12]

Несомненно, что в природе температурные условия среды обитания хозяина влияют на микроспоридиоз, способствуя его проявлению или тормозя распространение болезни. Однако вопрос этот слабо изучен не только для естественных, но и для лабораторных популяций насекомых. [13]

Особенно часто от бактериозов страдают насекомые, разводимые в лаборатории или инсектарии, где трудно соблюдать все условия их жизни в природных условиях. Штейнхауз ( 1945, 1951) описал заболевания, вызванные бактериями - симбионтами кишечника, в лабораторной популяции чернотелок и картофельной моли. [14]

Суспензия очищенных риккетсий, вводимая путем инъекций, очень инфекционна. Болезнь, которая была зарегистрирована во Франции, по-видимому, распространена очагами во всем мире в лабораторных популяциях сверчков. При неожиданных, быстрых вспышках болезнь вызывает относительно высокую смертность. [15]

Страницы: 1 2