Приготовление - срез
Cтраница 1
Приготовление электроннопрозрачных срезов ( как в биологии или медицине для светового микроскопа) в электронной микроскопии представляет большие трудности. Удаются такие срезы лишь в единичных случаях. [1]
При необходимости приготовления среза лист предварительно размягчают во влажной камере и с помощью бритвы делают толстый срез ( 2 - 3 мм), который закрепляют на предметном стекле пластилином. Более тонкие срезы помещают в о включающую жидкость и накрывают покровным стеклом. [2]
Описан способ приготовления срезов при быстром охлаждении ( сухим льдом) во избежание дезактивации антигенов. [3]
Вначале ожидали, что при приготовлении срезов древесины для спектроскопических исследований возникнут некоторые трудности. [4]
В предлагаемой работе студенты знакомятся с приготовлением срезов древесины и рядом гистохимических реакций, предложенных в работах У. [5]
 |
Форма для заливки бумаги. [6] |
Образцы бумаги часто неожиданно оказываются неподатливым материалом при приготовлении срезов. Для получения наилучших результатов требуются хорошая адгезия к матрице и хорошее пропитывание. Этим требованиям удовлетворяют жидкие смолы, например акрилаты, полиэфиры и эпоксидные смолы. [7]
 |
Кинетика сорбции мягкой и твердой пшеницы в зависимости от.| Гигроскопичность материала в зависимости от метода сушки. [8] |
Экспериментальную проверку этого предположения не удалось осуществить из-за отсутствия методики приготовления срезов для микроско-пирования без необходимости распаривания материала, которое, понятно, нельзя применить, исследуя величину пор сухого материала. [9]
В сущности методы с корковой пробкой являются упрощенными вариантами метода приготовления срезов при помощи пластинки и дают по существу те же самые результаты. Сообщения о более высоком качестве срезов, получаемых при помощи пластинки, следует принимать с осторожностью. Срезы, получаемые с пластинкой, не рекомендуется применять в ответственных исследованиях, так как они редко получаются тоньше 200 мк, а иногда могут быть в несколько раз толще. [10]
В последние годы при изучении тонких структур хлоропластов во избежание артефактов, получаемых при приготовлении срезов для электронного микроскопа, применяется метод, основанный на предварительном быстром замораживании изучаемого объекта жидким фреоном при температуре - 150 без предварительно химической фиксации и обезвоживания материала. Срезы делают на замораживающем микротоме. [11]
Срезы для светового микроскопа можно приготовить, не заливая материал в среду; для этого используют замораживающий микротом. В процессе приготовления замороженного среза образец сохраняется в замороженном и, следовательно, в твердом состоянии. [12]
Микроскопическое исследование срезов полезно для идентификации полимеров, особенно если они имеют форму волокон или находятся в многофазных системах. Хотя литература и изобилует описаниями методов приготовления срезов и их модификаций, не все они пригодны для получения хороших срезов полимерных материалов. Парафин, общепринятый материал для матриц, обычно не прилипает к срезам или разрушается в процессе приготовления срезов многих полимеров. [13]
Обычно в здоровых паренхимных и колленхимных клетках яблока имеется, как правило, только одна вакуоль. Является ли это результатом механического повреждения в момент приготовления среза или есть здесь иные причины, пока неясно. Аналогичную картину диспергирования клеточного сока на две-три вакуоли мы часто наблюдали в клетках, расположенных вблизи места поражения грибом. Оно, по-видимому, аналогично процессам, наблюдающимся в растительной и животной клетках, и может быть вызвано различными стимуляторами. На препаратах, окрашенных описанным выше способом, отчетливо видны гифы гриба В. [14]
На разрезах этой модели ( если провести их в разных плоскостях) можно было бы видеть, что одни участки содержат постулированные Хеджем раздвоенные структуры, тогда как другие напоминают модель Штеймана и Шестранда. Очевидно, картина, которую мы наблюдаем, должна во многом зависеть от метода приготовления срезов и от того, насколько часто встречаются в природе те или другие формы. В таком случае набухание изолированных тилакоидов в гипотонических растворах следует объяснить тем, что при разрушении хлоропластов края тилакоидов смыкаются. [15]
Страницы: 1 2