Cтраница 1
Хроматографическое разделение аминокислот осуществляется при помощи различных адсорбентов: активированного угля, оксида титана, селикагеля, ионообменных смол и др. В последнее время широко применяют метод распределительной хроматографии на бумаге. [1]
Хроматографическое разделение аминокислот проводят по методике, описанной на стр. [2]
Хроматографическое разделение аминокислот проводят по методике, описанной выше ( см. стр. После развития хроматограммы вырезают участки пятен, занимаемые аминокислотами; сбоку хроматограммы вырезают равные по площади опытным контрольные участки, не содержащие определяемых веществ. [3]
![]() |
Форма записи результатов исследования. [4] |
Хроматографическое разделение аминокислот проводят по методике, описанной выше ( см. стр. [5]
Хроматографическое разделение аминокислот проводят по методике, описанной на стр. [6]
Хроматографическое разделение аминокислот проводят по методике, указанной на стр. После развития окраски на хрома-тограмме в течение 15 мин при 60 С или в течение суток при комнатной температуре вырезают участки хроматограммы, занимаемые пятнами аминокислот; сбоку хроматограммы вырезают контрольные участки, равные по площади опытным. Вырезанные участки бумаги измельчают ножницами и помещают в пробирки. В каждую пробирку добавляют по 10 мл 0 005 % - ного раствора сульфата меди GuSO4 - 5H2O в 75 % - ном этиловом спирте; объем доводят до 100 мл 96 % - ным этиловым спиртом. [7]
Хроматографическое разделение аминокислот на бумаге, а) Растворы аминокислот: 5 мг аминокислоты ( глицина, аланина, валина, лизина, фенилала-нина) растворяют в 5 мл 10-процентного изопропилового спирта, подкисленного соляной кислотой. [8]
Результаты хроматографического разделения аминокислот регистрируются на диаграммной ленте в виде профиля элюиро-вания, где на оси абсцисс откладываются объем элюата, на оси ординат - количество вещества в отдельных фракциях. Симметричные пики соответствуют отдельным аминокислотам: базовая линия - фракциям, не содержащим нингидринположительных компонентов. При расчете содержания вещества в отдельных фракциях из полученных величин вычитают среднее значение высоты базовой линии, соответствующее данному пику. Среднюю высоту базовой линии определяют, соединяя прямой значения фона до и после пика и отсчитывая величину, соответствующую полуширине пика. Среднюю высоту базовой линии умножают на число фракций, соответствующих данному пику, и вычитают из суммарного содержания вещества в зоне; таким путем получают количество вещества в данном пике в пересчете на лейцин. Чтобы определить истинное содержание данной аминокислоты, эту величину умножают на фактор, который носит название лейцинового эквивалента и представляет собой отношение интенсивностей окраски данной аминокислоты и лейцина в стандартных условиях. [9]
Приняты два способа хроматографического разделения аминокислот на бумаге - - восходящий и нисходящий. При восходящем способе растворитель поднимается по бумаге снизу вверх, при нисходящем - - сверху вниз. Положение отдельных аминокислот обнаруживают путем проявления - обработки высушенной бумаги раствором нингидрина и последующего нагревания ее при 100 О. Па полоске бумаги ( хроматограмме) отчетливо видны пятна фиолетового, синего, голубого, желтого, оранжевого, коричневого цвета. [10]
В связи с этим проведение хроматографического разделения аминокислот в газовой фазе позволяет анализировать природные соединения, доступные в миллимикрограммовых количествах, что на несколько порядков превышает чувствительность фотометрических определений. [11]
В связи с этим проведение хроматографического разделения аминокислот в газовой фазе позволяет анализировать природные соединения, доступные в миллимикрограммовых количествах, что на несколько порядков превышает чувствительность фотометрических определений. [12]
В этой работе описывается применение автоанализатора для хроматографического разделения аминокислот. В автоанализатор вводится как один из блоков разделительная колонка с ионообменной смолой. Пропорциональный насос автоанализатора используется для прокачивания элюирующего раствора через колонку, подачи нингидринового реактива и циркуляции воды через рубашку разделительной колонки для ее термостатирования. В проточном реакторе автоанализатора проводится нингидриновая реакция. [13]
Основное внимание было уделено препаративным способам разделения аминокислот в гидролизатах белков на группы нейтральных, кислых и щелочных продуктов и хроматографическому разделению аминокислот в пределах каждой из этих групп и в исходных смесях. [14]
Как уже отмечалось, иониты на основе целлюлозы и дек-страна не обладают необходимыми механическими и ионообменными свойствами и вследствие этого их редко используют для хроматографического разделения аминокислот. [15]