Cтраница 1
Снижение концентрации сахара обусловлено повышением гликогенообразоеательной функции печени и мышц и увеличением интенсивности окислительного распада глюкозы. За единицу инсулина принята специфическая биологическая активность 0 045 мг стандартного кристаллического препарата, приготовленного Лабораторией по государственному контролю органопрепаратов в Москве. Это количество инсулина в течение часа снижает содержание сахара в крови кролика весом 2 кг, предварительно голодавшего 24 часа, до 45 мг % и вызывает у него возникновение судорог. [1]
Рассчитывают среднюю величину снижения концентрации сахара в крови на стандартный образец ( % S) и на испытуемый препарат ( % Т) по данным всего опыта. [2]
Среднюю величину при этом получают, объединяя индивидуальные цифры снижения концентрации сахара в крови в процентах в обоих опытах. При расчете окончательного результата должны быть использованы данные, полученные не менее чем на 30 кроликах. Если средняя величина R, по данным двух или большего числа опытов, будет меньше 0 85 или больше 1 15, испытание проводят заново, исходя из новой величины предполагаемой активности испытуемого препарата. [3]
Как и при испытании кроликов на чувствительность к инсулину, при расчетах не учитывают животных с исходной концентрацией сахара в крови ниже и выше пределов, установленных для используемого метода, а также реагирующих на указанную дозу инсулина судорогами или дающих снижение концентрации сахара в крови менее 15 % по отношению к исходной концентрации. [4]
Гелеобразование происходит при добавлении к силикатам различных Сахаров: сахароза, мальтоза, лактоза, фруктоза, глак-тоза, манноза и ксилоза. Снижение концентрации сахара в геле зависит от свойств изолируемых пластов. [5]
В целом организме наиболее важное, основное значение для регуляции содержания сахара в крови имеет нервный механизм. Установлено, например, что снижение концентрации сахара в крови ниже 70 - 80 мг % приводит к рефлекторному возбуждению высших метаболических центров, расположенных в гипоталамусе. Можно думать, что возбуждение метаболических центров вызывается при этом нервными импульсами, поступающими в центральную нервную систему с хеморецепторов клеток тканей и органов, находящихся в состоянии углеводного ( энергетического) голодания. [6]
В целом организме наиболее важное, основное значение для регуляции содержания сахара в крови имеет нервный механизм. Установлено, например, что снижение концентрации сахара в крови ниже 70 - 80мг % приводит к рефлекторному возбуждению высших метаболических центров, расположенных в гипоталамусе. Возбуждение передается из центральной нервной системы в печень по нервным путям в спинном мозгу, переходит через седьмой передний шейный корешок в симпатический ствол и по симпатическому нерву достигает печени. [7]
Имеются основания считать, что после возникновения гипергликемии также рефлекторно приводятся в действие механизмы, направленные на нормализацию концентрации сахара в крови. При этом не только снижается образование симпатинов в концевых аппаратах симпатического нерва но и одновременно рефлекторно возбуждаются те метаболические центры в центральной нервной системе, из которых по блуждающему нерву передаются импульсы в поджелудочную железу, вырабатывающую гормон инсулин. Повышенное выделение инсулина из поджелудочной железы быстро приводит к снижению концентрации сахара в крови. [8]
Определение биологической активности инсулина проводят на здоровых кроликах массой 2 5 - 3 5 кг. Животных массой 1 8 - 2 3 кг предварительно не менее 14 сут содержат в условиях вивария, где они получают овес, сено или свежую траву, корнеплоды, комбинированный корм и воду. По истечении этого срока определяют чувствительность кроликов к инсулину. Для этого кроликам дважды с интервалом 7 - 8 сут после 18 ч голодания вводят подкожно раствор стандартного образца инсулина из расчета 0 5 ЕД на 1 кг массы тела животного и определяют величину снижения концентрации сахара в крови в процентах. [9]
МЕТОД ОПРЕДЕЛЕНИЯ БИОЛОГИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ Определение биологической активности инсулина проводят на здоровых кроликах массой 2 5 - 3 5 кг. Животных массой 1 8 - 2 3 кг предварительно не менее 14 сут содержат в условиях вивария, где они получают овес, сено или свежую траву, корнеплоды, комбинированный корм и воду. По истечении этого срока определяют чувствительность кроликов к инсулину. Для этого кроликам дважды с интервалом 7 - 8 сут после 18 ч голодания вводят подкожно раствор стандартного образца инсулина из расчета 0 5 ЕД на 1 кг массы тела животного и определяют величину снижения концентрации сахара в крови в процентах. [10]
МЕТОД ОПРЕДЕЛЕНИЯ БИОЛОГИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ Определение биологической активности инсулина проводят на здоровых кроликах массой 2 5 - 3 5 кг. Животных массой 1 8 - 2 3 кг предварительно не менее 14 сут содержат в условиях вивария, где они получают овес, сено или свежую траву, корнеплоды, комбинированный корм и воду. По истечении этого срока определяют чувствительность кроликов к инсулину. Для этого кроликам дважды с интервалом 7 - 8 сут после 18 ч голодания вводят подкожно раствор стандартного образца инсулина из расчета 0 5 ЕД на 1 кг массы тела животного и определяют величину снижения концентрации сахара в крови в процентах. Из опытов исключают животных с исходной концентрацией сахара в крови ниже и выше пределов, установленных для используемого метода определения содержания сахара в крови ( ниже 75 мг % и выше 120 мг % для феррици-анидного метода, ниже 52 мг % и выше 94 мг % для глюкозоок-сидазного метода), а также тех животных, которые реагируют на введение инсулина судорогами или у которых снижение концентрации сахара в крови составляет менее 15 % по отношению к исходной концентрации. Определение биологической активности инсулина проводят не ранее, чем через 7 - 8 сут после испытания на чувствительность. [11]