Cтраница 4
Из кривых титрования ( рис. 7, 8 и 9) ясно видно, что при проведении комплексонометрических титрований следует тщательно подбирать условия определений. Это выгодно лишь при титровании щелочноземельных металлов. При титровании ионов тяжелых металлов прибавленное в составе буферного раствора вещество основного характера ( МНз) связывает в комплекс титруемый металл, вследствие чего начальная ветвь кривой титрования располагается выше и скачок рМ в точке эквивалентности ( при а 1) уменьшается. Даже при наличии акцептора протонов, не имеющего сродства к титруемому иону металла, невозможно существенное увеличение скачка рМ, так как в этом случае при повышении рН к ионам металла присоединяются ионы гидроксила до тех пор, пока не наступает выделение гидроокиси металла. Теоретически лучшими веществами для буферных растворов являются те, которые почти не образуют комплексов с металлом и предотвращают выпадение осадка гидроокиси. Таким требованиям лишь в какой-то степени отвечают аммиак и различные органические амины. Поэтому практические возможности комплексонометрии узко ограниченны. [46]
Колонки ( 7X0 9 см) с этим сорбентом присоединяются к обычному прибору для автоматического анализа аминокислот. Элюирование осуществляют со скоростью 2 мл / мин последовательно несколькими буферными растворами. Способ Морриса [9] предусматривает внесение небольших изменений в состав буферных растворов. [47]
Фотометр дает линейную зависимость сигнала от поглощения. Организован параллельный выход на самописец и аналого-цифровой преобразователь с частотой преобразования в десять измерений в секунду с выводом цифровых значений на ЭВМ. В ЭВМ также вводится точный временной режим изменения состава буферных растворов, температуры и последовательности всех операций, включая ввод образцов и регенерацию колонки. Анализ проводится на одной колонке размером 1 75X48 см при примерно 190 атм и заканчивается за 48 мин. [48]
Фракционирование путем электрофореза представляет собой суммарный результат действия многих факторов, некоторые из которых противоположны друг другу. При электроэндоосмосе присутствие фиксированных зарядов на мембранной или геле-вой матрице может вызывать результирующий поток воды в направлении, противоположном направлению миграции белков. В зависимости от изоэлектрической точки данного белка и состава буферного раствора белок может быть нейтральным, чисто катионным или чисто анионным. [49]
Аффинный сорбент А, приготовленный путем привязки ингибитора - п-аминофенил - р - о - тиогалактопиранозы - непосредственно к сефарозе, не связывает и не задерживает фермент в заметной степени. Прикрепление ингибитора через короткую ножку ( - 10 А) дает сорбент Б, который очень мало задерживает фермент во время его пропускания через колонку. Для освобождения фермента из комплекса нет необходимости в изменении состава буферного раствора, и фермент выходит из колонки сразу же за неактивным белком. Только когда между ингибитором и поверхностью носителя помещена длинная ножка ( - - 21 А), образующийся сорбент В способен сильно связывать р-галак-тозидазу из различных бактериальных источников. Элюи-рование фермента происходит только после замены буферного раствора. [50]
![]() |
Влияние изменения состава. [51] |
В настоящее время не представляется возможным на основании каких-либо общих соображений предсказать влияние растворителя на диссоциацию индикатора. Только немногие неводные и смешанные растворители были подробно изучены и значение рКтп в неводных средах определены лишь для нескольких индикаторов. Установлению поправки на влияние растворителя при индикаторных измерениях рН должны предшествовать разработка шкал рН и рекомендации состава буферных растворов с известными значениями рН в неводных и смешанных средах. [52]