Цвет - среда
Cтраница 2
Мы встречаемся здесь с примером обсуждавшегося выше случая, когда для системы, заключенной в твердую теплонепроницаемую оболочку при заданной полной энергии возможны несколько различных состояний термодинамического равновесия, соответственно нескольким различным относительным максимумам энтропии. Благодаря тому, что интенсивность излучения определенного цвета совершенно не зависит от температуры диатермической для этого цвета среды, заданную полную энергию тела можно совершенно произвольно распределять на излучение этого цвета и на тепловой запас тела; равновесие каждый раз будет возможно. Среди всех этих распределений должно существовать одно вполне определенное, соответствующее абсолютному максимуму энтропии. В отличие от остальных, в известном смысле неустойчивых, состояний это распределение обладает тем свойством, что вызвать в нем заметное изменение с помощью малого возмущения нельзя. [16]
Тест окисления-ферментации глюкозы проводят в пробирках со средой Хью-Лейфсона столбиками, в одну из которых заливают вазелиновое масло. Пробирки выдерживают в термостате при 37 С в течение четырех суток с ежедневным учетом результатов. Изменение цвета открытой среды с травянисто-зеленого на желтый свидетельствует об окислении глюкозы ( см. цв. [17]
Заслуживает внимания метод Calobert, Morilis ( 1958) в связи с быстротой получения ответа, демонстративно-стью, легкостью и точностью учета колоний с черным ореолом, образованных преимущественно энтерококками. Авторы разработали оригинальную среду, содержащую стимуляторы роста и питательные вещества, способствующие росту энтерококков; использованы способность энтерококков к более интенсивному развитию в анаэробных условиях и тест на эскулин как надежный дифференциальный признак всей группы санитарно-показательных стрептококков. Образование продуктов жизнедеятельности регистрируется по изменению цвета среды. [18]
Во все пробирки заливают индикаторную среду, содержащую бикарбонатную буферную систему и глюкозу. Снова инкубируют при 36 - 37 в течение двух-четырех дней. Клетки, не подвергшиеся действию вируса, в результате его нейтрализации AT, продолжают метаболизировать, поэтому цвет среды меняется с крас-яого на желтый. [19]
Желчно-эскулиновый тест проводят для оценки способности микроорганизмов гидролизовать эскулин в присутствии 40 % желчи. Культуру засевают на желчно-эскулиновый агар в чашке или пробирке ( на скошенную часть) и инкубируют 18 - 24 ч при 37 С. Энтерококки гидролизуют эскулин до глюкозы и эскулетина, который реагирует с цитратом железа, входящим в состав среды, в результате чего образуется коричнево-черный преципитат. При отрицательной реакции цвет среды не меняется. [20]
Предложены различные модификации метода, направленные на его совершенствование. Использовали индикаторный агар с бромкрезоловым пурпурным отчетливо фиолетового ( но не темного) цвета, разлитый тонким слоем в чашки. Чтобы диски не смещались, их предварительно закрепляют каплей агара. В результате ферментации изменяется цвет среды; газообразование определяют на основании появления пузырьков под углеводной бумажкой или вблизи от нее в толще агара. [21]
 |
Прибор для культивирования денитрифицирующих бактерии. [22] |
При постановке опыта наличие в среде нитрата устанавливается реакцией ( капельной) с ди фениламином, растворенным в крепкой серной кислоте. К ней добавляют каплю субстрата; при наличии нитрата капля окрашивается в темно-синий цвет. Прибор со средой и почвой помещают в термостат при температуре 28 - 30 С. После 5 - 6 дней инкубации культуру подвергают анализу: отмечают появление пузырьков газа под пробкой и цвет среды. [23]
Страницы: 1 2