Cтраница 4
С помощью специального режима центрифугирования из субклеточной фракции выделен осадок, содержащий 88 54 % активности кислой фосфатазы и 87 40 % активности арилсульфатазы. Инкубирование лизосом в растворах сахарозы различной концентрации не выявило изменений проницаемости их мембран у контрольных животных. В то же время свободная активность кислой фосфатазы в лизосомах подопытных животных возрастала достоверно с увеличением концентрации сахарозы. Полученные результаты позволили авторам заключить, что отсутствие белка в рационе вызывает значительное нарушение структуры лизосом и прежде всего липопро-теидного состава их мембран. [46]
Инкубирование сточных вод, загрязненных тетрахлорэтиленом, показало, что концентрация последнего непрерывно убывала с 87 8 - Ь 11 1 мкг / 60 мл до 27 8 6 1 мкг / 60 мл. [47]
Когда клетки вырастут, жидкую фракцию сливают, клетки промывают изотоническим раствором поваренной соли, добавляют свежую среду и засевают ее соответствующим вирулентным вирусом полиомиелита. После 3-дневного инкубирования вируса в этой культуре клеток последние полностью разрушаются и вирусы переходят в раствор. Остатки клеток удаляют центрифугированием и оставшийся раствор используют для вакцинации. Для сохранения вакцины ее замораживают. [48]
Возможно, что животные в какой-то мере обладают способностью синтезировать незаменимые аминокислоты. При инкубировании препаратов мозга однодневной мыши в присутствии равномерно меченной С14 - глюкозы изотопная метка была найдена почти во всех аминокислотах ( в том числе и в незаменимых), за исключением пролина и треонина. Исследование скоростей оборота показало, что от 5 до 12 % аминокислот в белках мозга были замещены с использованием углерода глюкозы. В аналогичных опытах с тканями печени и кишечника включения изотопа не наблюдали; оно не было обнаружено и в опытах с мозгом более взрослых животных. Едва ли молекулы незаменимых аминокислот могут целиком синтезироваться в мозге однодневного животного; в эксперименте около 50 % радиоактивности было найдено в а-карбоксильных группах аминокислот. [49]
Водный раствор ДНК смешивают с двумя объемами 98 % - ной муравьиной кислоты, содержащей 3 % дифениламина ( по весу), или с 2 8 объема 90 % - ной муравьиной кислоты, содержащей 2 7 % дифениламина. После 17 час инкубирования при 30 раствор приобретает фиолетовую окраску. Хромоген и избыточное количество реактивов удаляют, добавляя к реакционной смеси 0 5 объема воды и встряхивая эту смесь с 6 объемами эфира. Эфирный слой отбрасывают, а водный слой встряхивают с новыми порциями эфира еще 2 раза. Пурины удаляют с помощью дауэкса 50 ( Н), как это описано ранее. [50]