Выбор - буферный раствор
Cтраница 1
Выбор буферного раствора определяется исключительно природой фракционируемого материала. Если хлориды не вступают с последним в реакцию, то рекомендуется проводить хроматографиюна ДЭАЭ-целлюлозе в С1 - форме. [1]
Выбор буферного раствора при определении азо-групп имеет, по-видимому, большое значение. Так, Ивенсон и Нагель184 указывают, что растворы тартрата натрия, битартрата натрия и соли Рошелля являются наилучшими буферными растворами при восстановлении азокрасителей в макромасштабе. Присутствие тартрата необходимо при прямом титровании хлоридом титана ( III) для установления конечной точки по появлению желтой окраски раствора, но недопустимо при работе по методике, требующей избытка реагента с обратным титрованием последнего. [2]
С точки зрения техники анионообменная хроматография отлича - ется от катионообменной лишь выбором буферных растворов. [3]
Разработка типовой методики определения содержания основного вещества индикаторов заключалась в выборе подходящего растворителя, концентрации индикатора, выборе буферных растворов, при которых получаются устойчивые результаты. [4]
 |
Определение соотношения реагирующих компонентов методом изомолярных серий. [5] |
Для образования комплексного соединения необходимо соблюдать определенное значение рН раствора, поэтому при приготовлении растворов применяют буферные растворы. При выборе буферного раствора необходимо, чтобы отсутствовало комплексо-образование у иона металла с веществами, составляющими буферный раствор. [6]
Правильность выбора специфических ферментных показателей для определения пороговых концентраций ядов должна быть проверена в опытах in vitro. Если при такой концентрации in vitro яд не оказывает никакого действия на исследуемую ферментную систему, то трудно ожидать, что in vivo эта система будет повреждена при действии пороговых концентраций. Существенное значение имеет правильность выбора буферного раствора и продолжительности инкубирования при 37 - 38 реагирующей смеси. Отчетливый эффект in vitro дает основания для проведения исследований in vivo, но не гарантирует полного совпадения результатов. Особенности поступления, распределения, превращения и выведения яда, а также нервные и гуморальные эффекты могут существенно повлиять на результаты исследований. Однако в значительном числе случаев та или иная корреляция между результатами исследования iv vitro и in vivo сохраняется. Для примера приведем выполненное Н. В. Грохольской исследование действия органических перекисей на некоторые сульфгидрильные ферменты. Исходя из того, что органические перекиси являются сильными окислителями, можно было ожидать окисления ими SH-групп и угнетения активности сульфгидрильных ферментов. [7]
Кроме того, полнота образования комплексного соединения часто зависит от рН раствора. Оптимальное значение рН образования комплекса должно быть предварительно установлено ( см. стр. Обычно для этого используют буферные растворы. При выборе буферного раствора необходимо, чтобы комплексообразование иона металла с компонентами буферного раствора отсутствовало. Для получения воспроизводимых результатов ионная сила раствора также должна быть постоянной. [8]
 |
Выбор типа буферного раствора для ионообменной хроматографии. [9] |
При проведении ряда анализов пользуются катионитами в Н - форме и анионитами в ОН - - форме, буферировать их при этом не требуется. При работе с ионитами в солевой или смешанной форме Щ и соль или ОН - и соль) получить требуемые величины рН и ионной силы без буферирования не удается. Этого можно достичь, приведя ионит в равновесие с буферным раствором. Рекомендуемые общие принципы выбора буферных растворов и характеристики последних даны в табл. 5.9. Однако этим принципам следуют не всегда. В литературе можно встретить описания успешных хроматографических разделений, в которых применялись буферные растворы с градиентом концентрации, противоположным рекомендованному, но при этом могут отмечаться нерегулярности в ходе запланированного градиента. [10]
Страницы: 1