Cтраница 2
В целом токсикологические исследования органов-мишеней имеют следующие общие черты: детальное гистопатоло-гическое обследование органа-мишени, включая данные посмертного исследования, взвешивание органа и исследование фиксированных тканей; биохимические исследования критических путей попадания в орган-мишень, таких как важные ферментные системы; функциональные исследования возможности органа и клеточных компонентов выполнять ожидаемые метаболические и другие функции; анализ биомаркеров воздействия и ранних эффектов в клетках органов-мишеней. [16]
Прежде чем перейти к обсуждению возможностей применения методов спектрального анализа для решения вопросов медико-биологических, нам представляется необходимым рассмотреть, какие цели ставила себе до сих пор наука в своих исследованиях тканей различными химическими методами и какие методы оказались при этом целесообразными и полезными. С тех пор как выяснилось, что малые и мельчайшие количества тяжелых металлов, например, играют значительную роль в обмене веществ, все более и более нарастала потребность в создании таких методов качественного и количественного анализа, которыми можно было бы доказать наличие ничтожных количеств металлов, при самых малых количествах исходного материала. Среди этих методов методы химические отступили на второй план: они требуют сложной подготовки, для выполнения серийных исследований необходим значительный лабораторный аппарат; кроме того иногда они недостаточно чувствительны, чтобы определить требуемые небольшие количества, в особенности в случае небольших количеств исходного материала. [17]
Ценные вклады сделаны также Гамбургером ( см. ссылку 212), Плэттом ( см. ссылки 213 и 214) и Пейнтером ( см. ссылку 215), работающими в Лаборатории для исследования тканей. Новейшая литература, касающаяся данного вопроса, печатается преимущественно в Журнале исследований в области текстиля, Журнале текстильного института и в изданиях Института имени Ширли. [18]
В связи с этим были получены волокна из сополимера акрилонитрила и винилацетата. Исследование тканей из этих волокон показало, что волокна не в полной мере отвечают поставленным требованиям. Более детально эти вопросы будут освещены в последующих сообщениях. [19]
Была отмечена стойкая тенденция к уменьшению прироста массы в группе животных, получавших наибольшую из испытанных доз С1С2 - 5 мг на 1 кг массы. При патологическом исследовании тканей внутренних органов у отдельных животных как подопытных, так и контрольной групп обнаружено умеренное расширение сосудов слизистой и подслизистой оболочки пищевода и желудка. Общая структура печени была сохранена, гепатоциты обычного вида, в отдельных случаях отмечалось умеренное полнокровие центральных и междолевых вен. [20]
Таким образом, вывод Вертгейма о том, что его исследования тканей человеческого тела в посмертном состоянии можно экстраполировать на живые ткани, справедлив лишь для некоторых видов органических материалов. Его глубокая заинтересованность-в этом аспекте проблемы имеет, возможно, не меньшее значение, чем его беспрецедентные исследования тканей человеческого тела сами по себе. [22]
Метод ПГХ широко применяют в биомедицинских исследованиях, поскольку благодаря экспрессности и простоте анализа, а также высокой скорости получения результата он дает возможность диагностировать некоторые болезни и проследить за их развитием и лечением. В ранних работах Райнера [193, 236] была обнаружена чувствительность ПГХ к различным типам живых клеток. При исследовании тканей животных, содержащих нормальные и пораженные болезнью клетки, показано, что пирограммы этих клеток были различными. [23]
При исследовании волокна предварительно проводят испытание пробы на горение в пламени спички или горелки. Если волокна поступили на испытание в виде рыхлой массы, из них вручную приготовляют прядки. При исследовании ткани из нее выделяют отдельные нити. При горении отмечают поведение волокна при поднесении к пламени, при внесении в пламя и при удалении из пламени; вид остатка ( золы) после сжигания и запах при горении волокна. [24]
Первые два пункта, рассмотренные здесь применительно к тканям сердца, требуют установления способа континуализации исследуемого материала, т.е. представления его сплошной средой наделенной свойствами материала и описываемой выбранными термодинамическими параметрами. Определение такого способа тесно связано со структурными особенностями рассматриваемого объекта, процессами в нем протекающими и накопленным фактическим материалом макроэкспериментальных исследований его образцов. Поэтому формальным математическим построениям предшествует краткое описание результатов медико-биологических исследований тканей сердца. [25]
Белое и серое вещества мозга содержат различное количество воды и отчетливо дифференцируются на ЯМР-томограммах. У детей удается проследить процесс нормальной миелинизации. При исследовании тканей головного мозга получается отчетливое изображение различных участков мозга как в норме, так и при различных патологиях. [26]
Верхнюю пластинку укрепляют с помощью центрального винта. В зависимости от требуемой чувствительности могут быть использованы капилляры самых различных диаметров. При работе с тканями растительного происхождения удобно пользоваться узкими капиллярами диаметром 0 3 мм, так как скорость клеточного дыхания в этом случае невелика. При исследовании тканей животного происхождения могут быть использованы капилляры диаметром до 1 мм. Важно, чтобы все сгибы капилляра были сделаны аккуратно без сужений. В противном случае в месте сужения капилляра может застрять керосин, что отразится на работе прибора. [27]
Чувствительность определения ясно видна из следующих фотографий: рис. 53 содержит ряд снимков, полученных от обыкновенной мочи, к которой было прибавлено от 10 - 1 до 5.10 - 5 % ртути. Все снимки были сделаны в совершенно равных условиях. Таким образом мельчайшее количество ртути, поддающееся еще определению в концентрированной моче, равно 10 - 5о / о. Следовательно, нормальная моча должна содержать несколько более 1 6.10 - 6 % ртути или, выражаясь иначе, как это часто и делается, нормальное содержание ртути в моче должно быть равно или больше 16 if на литр. Количественное определение может быть получено с помощью добавки меди. Но для многих целей может оказаться достаточным определение порядка величины концентрации ртути по интенсивности ее линий, оценка коих при очень слабых концентрациях может быть сделана с точностью до одной десятой. В отличие от исследования тканей здесь такая оценка интенсивностей позволительна, потому что можно иметь условия съемки, воспроизводимые с равной предварительной подготовкой и равным возбуждением. Оказалось, что пациенты, получающие лечение ртутью, совершенно регулярно эту ртуть выделяют и при том найденные количества ртути превышают 16 - 100 f на литр. [28]