Cтраница 1
Каллюс получают следующим образом. Семена сои стерилизуютв 0 1 % - ном растворе сулемы 15 мин. [1]
Образование каллюса на раневой поверхности повышает также коэффициент поглощения воды. Этот зффект поранения используют для повышения поглощения ауксина при обработке черенков. [2]
Культура каллюса включает индуцирование и рост тканей каллюса и дифференциацию органов, что в конечном итоге должно привести к образованию вполне развитого растения. На первом этапе у растений стимулируется недифференцированный рост, или образование каллюса. Эти относительно равного диаметра и быстро делящиеся клетки обычно возникают в результате активного деления клеток на поверхности среза, но могут происходить и от единичных клеток. Недавно даже у пыльцевых зерен было вызвано придаточное образование тканей каллюса. [3]
Без ауксинов каллюсы, образованные на растительных тканях и изолированные в отдельную культуру, не способны делиться и переходить к процессу органогенеза. [4]
После образования каллюса в большинстве случаев требуется доступ рассеянного света. [5]
Наиболее благоприятна для образования каллюса температура 27 - 29 С. При зимних прививках, когда компоненты находятся в состоянии покоя, законченные прививки лучше всего хранить в течение одной-двух недель в теплых и влажных условиях, чтобы стимулировать образование каллюса. [6]
Оба вышеназванных биотеста с каллюсами высокоспецифичны для цитокининов. В обоих случаях цитокинины не могут быть заменены другими пуринами, пиримидинами, аминокислотами, ауксинами и гиббереллинами. Однако нет гарантии, что в растениях не существуют какие-то вещества, которые окажутся активными по отношению к этим тестам. [7]
Примерно через три недели вырастает каллюс, который очень чувствителен к содержанию в среде цитокининов. Его поддерживают в культуре и используют в качестве тест-объекта на цитокинины. Для этого кусочки каллюса 5x5x3 мм помещают по три на поверхность стерильной питательной среды Б в эрленмейеровские колбы с 50 мл среды, к которой добавлено исследуемое вещество. Постановку опытов и учет результатов проводят так же, как при работе с сердцевиной стебля табака. [8]
Прямая пропорциональность между сырым весом каллюса и концентрацией кинетика сохраняется в пределах от 0 004 до 10 мг / л этого вещества, что соответственно равно 0 2 - 500 мкг кинетина на пробу. [9]
Культура каллюса включает индуцирование и рост тканей каллюса и дифференциацию органов, что в конечном итоге должно привести к образованию вполне развитого растения. На первом этапе у растений стимулируется недифференцированный рост, или образование каллюса. Эти относительно равного диаметра и быстро делящиеся клетки обычно возникают в результате активного деления клеток на поверхности среза, но могут происходить и от единичных клеток. Недавно даже у пыльцевых зерен было вызвано придаточное образование тканей каллюса. [10]
Некоторым растениям, например винограду, для образования каллюса необходим кислород. Такие растения не следует обмазывать садовым варом, чтобы не препятствовать доступу кислорода. [11]
В качестве слабых сторон тестов на цитокинины с каллюсами следует отметить два момента: длительность времени, нужного для количественной оценки кининовой активности, и необходимость стерильных условий работы. [12]
Влияние пасоки на рост колеоптилей злаков, изолированных корней и каллюсов. [13]
Новые придаточные почки закладываются в разросшейся возле среза защитной ткани - каллюсе. Здесь же нередко вырастают и придаточные корни. Недостатком низкой резки является то, что развивающийся побег прикрепляется к материнскому черенку сбоку и легко обламывается. [14]
Существует несколько модификаций биотеста на цитокинины, основанного на стимуляции ими роста каллюса в изолированной стерильной культуре. Стерильность дает этому тесту большое преимущество, так как исключает побочное влияние микроорганизмов. Вместе с тем необходимость стерильных условий ограничивает широту его применения. [15]