Исходная культура

Cтраница 2

Впервые роль каротиноидов в предотвращении летального эффекта, вызываемого фотоокислением, была показана при изучении бескаротиноидного мутанта пурпурной бактерии Rhodopseu-domonas spheroides. Исходная культура хорошо росла фототрофно в анаэробных условиях, но могла также расти на свету и в темноте в аэробных условиях. Полученный из нее мутант, лишенный каротиноидов, обладал низкой скоростью роста на свету в анаэробных условиях и в темноте в аэробных условиях, но быстро погибал при перенесении на свет воздух. Фотоокислительные повреждения могут развиваться и у нефотосинтезирующих прокариот, так как в их клетках также имеются окрашенные молекулы, поглощающие видимый свет, которые могут функционировать как фотосенсибилизаторы. Действие каротиноидов не ограничивается только их участием в защите от фотодинамического эффекта. Они гасят синглетное состояние кислорода независимо от того, в каких реакциях он возникает: на свету или в темноте. [16]

Источниками организационной культуры служат: видение организации и ее задачи, определяемые основателем организации. Основатели формируют исходную культуру, определяя образ будущей компаний. Новые организации при их создании бываю небольшими, что существенно облегчает передачу заложенных ценностей сотрудникам. Традиции, церемонии, ритуалы и общий принцип деятельности организации во многом определяются тем, что было сделано ранее и сколько усилий при этом было затрачено. [17]

По окончании стерилизации пробирки со средой оставляют в вертикальном положении для получения агара столбиком. Посев среды исходной культурой производят около пламени спиртовки или газовой горелки иглой путем укола в агар. [18]

Для технической реализации наиболее простым способом является щелочная обработка суспензии микроорганизмов, например дрожжей или активного ила. При этом имеет важное значение состояние исходной культуры микроорганизмов. Для получения биофлокулянтов следует применять по возможности физиологически активную культуру. [19]

Смешивают одну часть по объему концентрата питательных веществ с восемью частями воды. Затем добавляют достаточное количество клеток из исходной культуры водорослей, так чтобы при доведении объема до 10 частей доразбавлением водой плотность клеток составила порядка 104 клеток на кубический сантиметр. [20]

Смешивают одну часть по объему концентрата питательных веществ с восьмью частями воды. Затем добавляют достаточное количество клеток из исходной культуры водорослей так, чтобы при доведении объема до 10 частей разбавлением водой, плотность клеток составила порядка 101 клеток на миллилитр. [21]

Замечательно то, что изменением условий питания, температуры и освещения можно сильно варьировать органический состав хлореллы. Например, из одной и той же исходной культуры были получены водоросли, содержавшие 58 % белка, 37 5 -углеводов и 4 5-жира, или 8 7 - белка, 5 7 - углеводов и 85 6 - жира. [22]

Замечательно то, что изменением условий питания, температуры и освещения можно сильно варьировать органический состав хлореллы. Например, из одной и той же исходной культуры были получены водоросли, содержавшие 58 % белка, 37 5 - углеводов и 4 5 - жира или 8 7 - белка, 5 7 - углеводов и 85 6 - жира. [23]

Существуют два способа культивирования микроорганизмов в глубине жидкой среды: периодический и непрерывный. При периодическом способе культивирования питательная среда засевается исходной культурой продуцента, и далее в этой же емкости микроорганизмы при определенных условиях проходят через все стадии роста и развития популяции. Когда процесс культивирования заканчивается, емкость для выращивания освобождают и цикл возобновляется, начиная от засева стерильной питательной среды исходной культурой продуцента. [24]

Затем из каждых 5 - 6 пробирок отбирают одну и проверяют находящийся в ней микроорганизм на способность образовывать то вещество, продуцентом которого он является, например белок или липиды. Проведение такой непрерывной селекции позволяет сохранить в активной форме исходную культуру продуцента. [25]

Возможно наилучшим способом является создание нескольких небольших колоний, которые периодически тщательно осматривают и удаляют всех нежелательных паразитов и хищных насекомых, а также всех больных особей хозяина. Для полного завершения этой работы потребуется не меньше одного-двух поколений, но к выполнению программы массового разведения энтомофагов нельзя приступать до тех пор, пока не будет гарантирована абсолютная чистота исходной культуры насекомых-хозяев. [26]

Поэтому для исследования, безусловно, необходимо использовать синхронные культуры с од-новозрастными особями, которые последовательно проходят различные фазы роста и развития от темновых Дн и Да до световых Л3, где Дн и Да - темновые рождающиеся активные клетки, Ль 2 з-световые растущие и созревающие клетки. Последовательное развитие и рост клеток водорослей обусловлены воздействием на культуру света, температуры, минерального питания и другими факторами. Поэтому необходимо стандартизировать условия исходных культур, а также условия контроля и опыта, чтобы твердо быть уверенным в том, что изменения, происходящие в опыте, будут зависеть только от изучаемого фактора. Это в конечном счете даст возможность определить максимальное значение фактора токсичности и установить прямое его влияние на рост и развитие всей популяции клеток с учетом изменений, происходящих в цикле их жизни. [27]

В исходной культуре пневмококков содержатся мутанты, устойчивые к пенициллину. При добавлении этой ДНК к исходной культуре в ней возникает значительно больше Р - мутантов, чем в отсутствие трансформирующего фактора. Если число спонтанных Р - мутан-тов составляло 1 на 107 клеток, то в результате трансформации оно увеличивалось на 4 - 5 порядков. [28]

Схема получения чистой культуры посевного материала. [29]

Споры микроорганизмов, которые образованы неполовым путем, представляют собой наилучшую форму сохранения исходной, музейной культуры продуцента биологически активных веществ. Однако при длительном хранении даже совершенно однородных клеток и спор могут возникнуть спонтанные нерегулируемые мутации. Поэтому необходимо не только соблюдать правила хранения и поддержания исходной культуры, но и периодически проводить рассев культуры и проверку ее однородности как по морфологическим, так и по физиологическим признакам. [30]

Страницы: 1 2 3