Световая микроскопия

Cтраница 2

Преимущество метода световой микроскопии в сочетании с растяжением объекта на поддерживающей пленке по сравнению с контактной микрорадиографией заключается в том, что он позволяет наблюдать быстропротекающие явления, поскольку растянутый образец все время доступен для наблюдения. [16]

Наблюдение методами обычной световой микроскопии за процессами, предшествующими деформации, практически неосуществимо, так как накапливание внутренних напряжений, полигонизация и тому подобные явления, приводящие в дальнейшем к проявлению сдвигов и перемещений, сказывающихся на образовании микрорельефа на поверхности образца, не могут быть выявлены оптическими методами. [17]

Исследование на уровне световой микроскопии может быть неинформативно, если патоморфологические изменения касаются субклеточных структур. [18]

Электронная микрофотография места контакта зрелых члеников ситовидной трубки. КС - клетка-спутница. П - ситовидная пора. Пл - пластида. ФБ - флоэмный белок. [19]

Строение флоэмы по данным световой микроскопии описано в разд. Эта ткань содержит проводящие трубки, называемые ситовидными, которые образованы клетками - члениками ситовидных трубок, - соединенными в ряд своими торцами. [20]

Различные микровключения выявляют с помощью световой микроскопии. Использование этого метода в сочетании с пиролитиче-ской газовой хроматографией ( ПГХ) позволяет решить проблему идентификации включений, в том числе полимерного характера. [21]

В последние годы технические возможности световой микроскопии значительно расширились. [22]

В последние годы технические возможности световой микроскопии значительно расширились. Максимальное увеличение световых микроскопов достигло предельной величины - 2100, что позволяет отличать частички размером и 3 - 0 4 мк однако надежные результаты возможно получить на частичках размером до 5 мк. [23]

Малоугловые рентгенограммы образцов ПММА, растянутых в. [24]

В работе [128] с помощью световой микроскопии было определено изменение расстояний между стенками микротрещин при нагревании поликарбоната в интервале от температуры, при которой проводили деформацию полимера и удаление из его структуры жидкой среды, до его температуры стеклования. Результаты этих экспериментов приведены на рис. 3.2. Хорошо видно, что задолго до Тс ( практически от комнатной температуры) начинается значительное уменьшение ширины микротрещины, в то время как неориентированные участки между ними даже слегка увеличивают свои размеры из-за теплового расширения. Следовательно, наблюдаемая низкотемпературная усадка обусловлена процессами, происходящими внутри микротрещин, а также свойствами высокодисперсного ориентированного полимера. По достижении Тс микротрещины, уже уменьшившие свою ширину на 90 - 95 %, залечиваются и становятся невидимыми в микроскопе. [25]

Экспериментально ее определяют с помощью световой микроскопии по исчезновению сильнее травящихся остатков деформированной матрицы и рентгенографически - по исчезновению на рентгенограмме размытых дебаевских колец. [26]

Грабб и др. [74], используя световую микроскопию и сканирующую калориметрию, сравнили плавление способных к перегреву фибриллярных кристаллов в образцах полиэтилена, полученных при продавливают расплава через капилляр и фильеру, а также в тонких планках, сформированных прес сованием, с плавлением кристаллов типа шиш-кебаб, которые образуют ся при кристаллизации перемешиваемых растворов. Было установлено, что плавление всех этих ориентированных кристаллов происходит в основном одинаково. Бландел и др. [23] показали, что для каждых выбранных условий экструзии существует своя предельная температура, выше кс рой уже не образуются фибриллярные кристаллы, способные перегреваться, и которая зависит от молекулярного веса полимера. [27]

Этот метод, по аналогии со световой микроскопией, применяющей окрашивание животных или растительных тканей, используют, главным образом, при исследовании биологических объектов или полимеров для получения сведений об их морфологической структуре. [28]

Нейтральный формалин, нашедший широкое применение в световой микроскопии, ограниченно применяется в электронной микроскопии [2-4], так как ткани, фиксированные формалином, заметно разбухают при заливке в метакри-латные среды и очень чувствительны к бомбардировке электронами. [29]

Микроскопический метод делится на два самостоятельных раздела: световая микроскопия и электронная микроскопия. [30]

Страницы: 1 2 3 4