Cтраница 1
Для биопробы используют белых мышей, которых заражают центрифугатом спинномозговой жидкости, крови, пунктатом лимфатических узлов, трупным материалом и пр. Кровь ( 3 - 4 мл) центрифугируют на низких оборотах, отбирают плазму и повторно центрифугируют. [1]
Правильный выбор биопроб очень важен для оценки биологической роли регуляторов роста любой природы. Использование коле-оптилей пшеницы сорта Краснозерная при исследовании активности веществ, выделенных из клубней картофеля, не дало воспроизводимых результатов. Действительно, работая с черенками фасоли, мы получили хорошо воспроизводимые результаты. [2]
Стандартность материала на биопробу проверяют с помощью кривой Гаусса. Для построения кривой 100 горошин выращивают, как описано выше, на дистиллированной воде и затем на четвертые сутки замеряют длину проростков. Не все горошины вырастают на одинаковую величину, поэтому проростки разделяются на группы, отличающиеся по высоте на 0 5 см. На графике по оси ординат откладывается число проростков в группе, а по оси абсцисс - группы. Если кривая одновершинна и вытянута вдоль оси ординат, то материал можно считать стандартным. [3]
Это основывается на результатах биопроб на мышах, когда акриламид поступал в организм разными путями, вызывая различные формы рака, и на данных о его вредном воздействии на ДНК, а также на его способности образовывать аддукты. Химическая структура акриламида также дает основания считать его канцерогенным для человека. [4]
Для диагностики лейшманиоза применяется и биопроба. Заражают животных ( внутрисердечно, внутрипеченочно, внутрибрюшинно, внутривенно) и определяют наличие возбудителя в селезенке, костном мозге, лимфатических узлах, печени. [5]
В изучении функций фитогормонов метод биопроб, или биотестов, сыграл и продолжает играть ведущую роль. Биотестом, или биопробой, считают такие объекты ( растение или отдельные его части), которые обладают повышенной чувствительностью в отношении вводимых извне фитогормонов или ингибиторов. [6]
В основе диагностики лежит выделение возбудителя, биопроба и иммунологические исследования. [7]
В общем случае химическим или бактериальным превращениям биопроб способствует наличие воды. Поэтому в некоторых методиках перед хранением проб рекомендуется их сушка. Однако она необратимо изменяет биологическую матрицу. Так называемую сухую массу, как правило, применяют лишь для сравнения данных, полученных в разных лабораториях, поскольку при сушке на состав образца влияют температура, вид биологического материала и природа определяемых компонентов. Так, большая часть ртути теряется при сушке; то же наблюдается для мышьяка и селена. [8]
В общем случае химическим или бактериальным превращениям биопроб способствует наличие воды. Поэтому в некоторых методиках перед хранением проб рекомендуется их сушка. Однако она необратимо изменяет биологическую матрицу. Так называемую сухую массу, как правило, применяют лишь для сравнения данных, полученных в разных лабораториях, поскольку при сушке на состав образца влияют температура, вид биологического материала и природа определяемых компонентов. Так, большая часть ртути теряется при сушке; то же наблюдается для мышьяка и селена. Более предпочтительна лиофилизация, в ходе которой биологический материал изменяется меньше. [9]
Рыбоядное действие ротенона может быть использовано в биопробе, например, применяя гуппи ( Pagan С. [10]
Из-за ряда недостатков первых двух методов чаще всего применяют методы биопроб, которые введены в Фармакопеи различных стран мира. [11]
К гиббереллиноподобным веществам ( ГПВ) относят соединения, обладающие специфической активностью в биопробах на гиббереллины, но не идентифицированные химически. [12]
С этой целью бензольный очищенный экстракт образца подвергают исследованию тремя независимыми методами: методом биопроб, определением общего количества органического хлора и методом, позволяющим установить антихолинэстеразное действие. Совместная обработка полученных результатов позволяет придти к определенным выводам. [13]
Не менее 90 % всех публикаций, посвященных определению ПХДД, ПХДФ, ПХБ и других высокотоксичных ксенобиотиков в природных объектах и биопробах, тем или иным образом имеют отношение к хрома-то-масс-спектрометрии. [14]
Не менее 90 % всех публикаций, посвященных определению ПХДД, ПХДФ, ПХБ и других высокотоксичных ксенобиотиков в природных объектах и биопробах, тем или иным образом имеют отношение к хрома-то-масс-спектрометрии. Такие достоинства масс-спектрометрии, как высокая чувствительность, селективность, анализ проб в разных агрегатных состояниях, быстрота определений, возможность идентификации соединений делают ее незаменимым методом при мониторинге суперэко-токсикантов на различных стадиях исследования. Она незаменима как на первом этапе, когда требуется детальный анализ сложных смесей с подтверждением их состава, так и в дальнейшем, когда рутинный анализ можно выполнять с помощью более простых методов, но необходамы контрольные и арбитражные определения. [15]