Cтраница 1
Каротиноидные пигменты поглощают свет в синем и зеленом участках спектра, т.е. в области длин волн 400 - 550 нм. Эти пигменты, как и хлорофиллы, локализованы в мембранах и связаны с мембранными белками без участия ковалентных связей. Функции каротиноидов фотосинтезирующих эубактерий многообразны. [1]
Желто-оранжевые каротиноидные пигменты рассматривают как производные тетратерпенов. Окраска каротиноидов обусловлена наличием в молекуле длинного ряда сопряженных двойных связей. Каротиноиды, представляющие собой углеводороды, называют каротинами, а их кислородсодержащие производные - ксантофиллами. Каротиноиды липофильны - растворимы в жирах ( маслах), в ди-этиловом эфире. Растворимость в других растворителях определяется строением каро-тиноида. [2]
Вследствие большого количества каротиноидных пигментов и их большого сходства часто бывает целесообразно перед разделением на колонке до и после омыления распределить их между различными несмешивающимися растворителями. Сходные по свойствам каротиноиды сосредоточиваются в одном из растворителей, что и приводит к их разделению. [3]
Наиболее разнообразен состав каротиноидных пигментов у пурпурных бактерий, из которых выделено свыше 50 каротиноидов. В клетках большинства пурпурных бактерий содержатся только алифатические каротиноиды, многие из которых принадлежат к группе ксантофиллов. У некоторых пурпурных серобактерий обнаружен арильный моноциклический каротиноид окенон, а у двух видов несерных пурпурных бактерий найдено небольшое количество р-каротина, алициклического каротиноида, распространенного у цианобактерий и фотосинтезирующих эукариот-ных организмов. Набор и количество отдельных каротиноидов определяют окраску пурпурных бактерий, густые суспензии которых имеют пурпурно-фиолетовый, красный, розовый, коричневый, желтый цвета. [4]
Представлена методика разделения и выделения отдельных каротиноидных пигментов из липидов современных осадков с помощью ТСХ на закрепленном слое силикагеля марки LSL 5 / 40 и стандартных пластинках сплуфола в системах растворителей различной полярности. Преобладающие каротины и ксантофиллы идентифицированы на основании характеристик, полученных методами УФ-спектро-скопии и масс-спектрометрии. Приведены электронные спектры поглощения в видимой области для 11 идентифицированных каротпноидов. [5]
Особое значение среди пигментов микробов имеют каротиноидные пигменты, к которым принадлежат пигменты микроорганизмов, имеющие красно-розовую, красно-оранжевую и желтую окраску. [6]
Френч пришел к заключению, что красные каротиноидные пигменты пурпурных бактерий фотосинтетически неактивны. Следует отметить, что со спектроскопической точки зрения пурпурные бактерии особенно удобны для изучения роли каротиноидов благодаря тому, что максимумы поглощения бактериальных каротиноидов не закрываются полосами поглощения хлорофилла, как у зеленых растений и даже у фукоксантоловых водорослей. [7]
При исследовании различных родов цианофицей [82] выявлены каротиноидные пигменты - - у-каротин и миксоксанто-филл - с максимумами поглощения в ацетоне 450 и 480 нм. Пз них мпксоксантофилл присущ исключительно цианофицеям. Все перечисленные выше пигменты Cyanophyta принимают прямое или косвенное участие в фотосинтезе. Имеются указания на то, что билихромопротеиды непосредственно в реакции фотосинтеза не участвуют, но являются переносчиками световой энергии на хлорофилл а, обеспечивающий фотосинтез. [8]
Цвет масел и жиров связан с наличием каротиноидных пигментов, которые в видимой части спектра имеют сложную полосу поглощения с тремя максимумами. [9]
Среди каротинов нециклическое строение имеет ликопин, который является главным каротиноидным пигментом в плодах красных томатов. В листьях он, по-видимому, не встречается. [10]
Итак, в результате проведенных исследований в осадках обнаружен ряд новых каротиноидных пигментов, установленных ранее только в живых организмах. [11]
Высказано мнение [54], что вероятными предшественниками соединений В и Г могут быть каротиноидные пигменты, распространенные в организмах. [12]
В ряде работ показано, что синтез и распад ( turnover) хло-рофиллов и каротиноидных пигментов продолжается и в зрелых, функционирующих хлоропластах, однако для более детальной характеристики этих процессов необходимы дальнейшие исследования. [13]
Каротин экстрагируют из исследуемого материала ацетоном и затем добавляют бензин и перемешивают. Из бензинового раствора удаляют другие каротиноидные пигменты ( ксантофиллы, ликопин и др.), а также хлорофилл методом хроматографическои адсорбции. Количество каротина в очищенном бензиновом растворе определяют колориметрически по интенсивности желтой окраски раствора сравнением его с раствором азобензола, который стандартизован по чистому каротину. [14]
Успешно выращивают в темноте лишь несколько видов сине-зеленых водорослей ( Cyanophyceae, или Cyanobacteria); в опытах с одним из них ( Chlorogloea fritschii) были получены интересные результаты. У этого организма хлорофилл и каротиноидные пигменты синтезируются в темноте, но в фотосинтетические мембраны при этом не встраиваются. Для того чтобы это произошло, необходим свет. [15]