Cтраница 3
При гидролизе оно распадается с образованием х-аланина. Близость нового синтетического полипептида к природным белкам была показана в ряде очень интересных биохимических опытов. Оказалось, что этот синтетический продукт может быть использован взамен натуральных белков при приготовлении питательных сред для микробов. Очень важно и то, что по методу Бресслера, исходя из оптически активной оксикислоты, можно-получить и оптически активные высокомолекулярные соединения. В частности, в своих опытах Бресслер исходил из амида / - молочной кислоты и получил продукт, построенный, как и натуральные белки, из остатков / - аминокислоты. Возможно, что именно поэтому полученный синтетический продукт усваивается микроорганизмами. [31]
При гидролизе оно распадается с образованием а-аланина. Близость нового синтетического полипептида к природным белкам была показана в ряде очень интересных биохимических опытов. Оказалось, что этот синтетический продукт может быть использован взамен натуральных белков при приготовлении питательных сред для микробов. Очень важно и то, что по методу Бресслера, исходя из оптически активной оксикислоты, можно получить и оптически активные высокомолекулярные соединения. В частности, в своих опытах Бресслер исходил из амида / - молочной кислоты и получил продукт, построенный, как и натуральные белки, из остатков / - аминокислоты. Возможно, что именно поэтому полученный синтетический продукт усваивается микроорганизмами. [32]
Перед испытанием поверхность изделия тщательно промывается или протирается спиртом. Изделия помещают в камеру грибообразования. Вместе с изделиями в камеру ставятся контрольные чашки Петри ( обычно две) с питательной средой. Состав и порядок приготовления питательной среды дается в специальной инструкции. Изделия, а также контрольные чашки с питательной средой опрыскиваются из пульверизатора водной суспензией спор грибков из расчета 50 мл суспензии на 1 м3 полезного объема камеры. Вся поверхность изделий должна быть опрыскана равномерно. Подвергать испытаниям рекомендуется образцы, не прошедшие других испытаний. [33]
Приборы помещаются в камеру и после установления в ней температуры 60 G выдерживаются в течение 4 час. Затем приборы извлекаются из камеры и после выдержки в нормальных климатических условиях в течение 1 - 6 час производится внешний осмотр и измерение электрических параметров, указываемых в ТУ. После этого приборы помещаются в камеру и устанавливаются на расстоянии не менее 10 ел от стенок камеры и не менее 5 см друг от друга. Вместе с полупроводниковыми приборами в камеру ставятся две контрольные чашки Петри с питательной средой Состав и порядок приготовления питательной среды дается в специальной инструкции. Приборы, а также контрольные чашки Петри с питательной средой опрыскиваются из пульверизатора с диаметром выходного отверстия не менее 1 мм водной суспензией спор грибков из расчета 50 мл суспензии на 1 ж3 полезного объема камеры. [34]
Компоненты питательной среды подаются в реактор через дозирующие устройства 7, рН среды доводится до 5 5 - 5 8 известковым молоком. Главным составляющим питательной среды может быть гидролизат растительного сырья либо любой другой источник углерода, используемый на данном заводе. Состав и количество солевых добавок могут меняться в зависимости от состава используемого сырья. Общая длительность приготовления питательной среды около 10 ч, поэтому для обеспечения непрерывности работы цеха приготовления посевного материала устанавливают 2 - 3 реактора. [35]
ТТХ агаре с концентрацией ТТХ 1: 450 вырастает несколько меньшее количество coliform по сравнению с контрольной средой. Однако действие ТТХ в значительной степени зависит от состояния обмена веществ микроба. ТТХ вырастает только 65 % колоний по сравнению со средой Эндо, через 2 сут 40 %, через 5 сут 5 % колоний. Добавлением к ТТХ агару 20 % молока несколько увеличивает число высеваемых колоний. ТТХ агаре зависит от состава и метода приготовления питательной среды. Обычный агар, по данным Selenka ( 1958), непригоден в качестве основного субстрата для ТТХ агара, используемого в бактериологическом анализе воды из-за отсутствия ионов кальция, активизирующих дегидразу. Ионы обычно выпадают в виде труднорастворимых фосфатных соединений при добавлении в среду фосфатов или при сильном подщелачивании ее перед стерилизацией. [36]
ТТХ агаре с концентрацией ТТХ 1: 450 вырастает несколько меньшее количество coliform по сравнению с контрольной средой. Однако действие ТТХ в значительной степени зависит от состояния обмена веществ микроба. ТТХ вырастает только 65 % колоний по сравнению со средой Эндо, через 2 сут 40 %, через 5 сут 5 % колоний. Добавлением к ТТХ агару 20 % молока несколько увеличивает число высеваемых колоний. ТТХ агаре зависит от состава и метода приготовления питательной среды. Обычный агар, поданным Selenka ( 1958), непригоден в качестве основного субстрата для ТТХ агара, используемого в бактериологическом анализе воды из-за отсутствия ионов кальция, активизирующих дегидразу. Ионы обычно выпадают в виде труднорастворимых фосфатных соединений при добавлении в среду фосфатов или при сильном подщелачивании ее перед стерилизацией. [37]