Cтраница 2
Предложен точный метод определения сбраживаемых Сахаров в сульфитных щелоках, пригодный и для определения Сахаров в солодовом заторе, пивном сусле и бродильных растворах мелассы, патоки и осахаренной древесины, а также в моче, в сыворотке, в вытяжках из животных тканей. [16]
Результаты опытов показывают, что инверсия в чистом растворе сахарозы протекает значительно сильнее, чем в растворе мелассы при 80, содержание инверта в растворе сахарозы возросло в 601 6 раза, а в растворе мелассы - лишь в 8 38 раза, несмотря на более низкое значение рН раствора ( рН растворов после часового контакта с катиони-том равнялось: для раствора мелассы-2 ед; для раствора сахарозы - 4 2 ед. [17]
Из анализа результатов опытов видно, что инверсия сахарозы в растворах мелассы при контакте с катионитом в Н - форме происходит менее интенсивно, чем в чистых растворах сахарозы. Это объясняется тем, что в растворе мелассы происходит обмен ионов водорода на ионы Na, К, Mg, Са и другие катионы, и инверсия сахарозы происходит лишь за счет Н - ИОНОБ, перешедших в раствор. Этим как бы снижается роль катионита как катализатора. [18]
На этом же рисунке для сравнения приведена кривая изменения содержания ин-верта в растворе мелассы при контакте с катионитом. Из сравнения графиков видно, что инверсия сахарозы в растворе мелассы в присутствии HaSCh протекает несколько сильнее, чем при контакте с катионитом в Н - форме, но менее интенсивно, чем при тех же условиях в чистом растворе сахарозы. При 20 наблюдается увеличение инверта: в растворе мелассы при контакте с катионитом в 2 2 раза; в растворе мелассы в присутствии № SO4 - в 6 46 раза; в чистом растворе сахарозы в присутствии НзЗСЬ в - 32 4 раза. [19]
Одним из самых дешевых видов сырья для получения глютаминовой кислоты является сепарационный щелок. Он представляет собой отбросный продукт свеклосахарного производства, получающийся при осаждении сахара из раствора мелассы известью в виде сахарата кальция. [20]
Если избыток меди ясно виден в первом стакане ( что узнают по синей окраске раствора), то для анализа берут 20 мл осветленного раствора мелассы. Если же избыток меди заметен только во втором стакане, то для определения берут 10 мл раствора мелассы и 15 мл дистиллированной воды. Если избыток меди не обнаружен и во втором стакане, то проводят разбавление приготовленного раствора в 5 раз, отбирая 50 мл его в мерную колбу вместимостью 250 мл и добавляют дистиллированную воду до метки при температуре 20 С. [21]
Промышленное производство лимонной кислоты до сих пор часто ведется без соблюдения стерильности, поверхностным способом в кюветах. В бродильные камеры помещают алюминиевые кюветы ( размером 2 х 2 5 х 0 15 м), заполненные на высоту 8 см раствором мелассы, и после инокуляции спорами гриба выдерживают их 9 - 11 дней при 30 С. Выход продукта получается весьма значительным. [22]
Было проведено два эксперимента. Согласно первому, в одну из нагнетательных скважин в течение 10 дней закачивали равномерными порциями по 200 м3, 3 5 % - ный раствор мелассы в пластовой воде с добавкой 7 5 м3 накопительной культуры бактерий рода Clostridium и Pseudomonas и 0 1 % суперфосфата. Сразу же после закачки мелассы было возобновлено заводнение. [23]
Восстановление органическими соединениями проводят при нагревании под давлением. В стальные автоклавы большой емкости ( - 10 м3), снабженные змеевиком и мешалкой, вначале загружают раствор натриевого хромпика концентрацией 65 - 70 % ( лучше смесь Na2CrO4 с Na2Cr2O7 в отношении 1: 4), нагревают до 90 С, закрывают автоклав, а затем медленно с помощью насоса вводят раствор мелассы плотностью 1140 кг / и3 в количестве 40 - 45 вес. [24]
Это тем более необходимо, так как часть из них способна давать цветную реакцию с нингидрином. Для этого раствор мелассы ( 4: 1) последовательно пропускали через катионит КУ-2 в Н - форме и анионит ЭДЭ-10П в ОН-форме. [25]
Мелассу разбавляют водой в соотношении 1: 1 - 1: 4, подкисляют серной кислотой до рН 5 0, осветляют центрифугированием в специальных кларификаторах. При центрифугировании из среды удаляются вещества, которые могут ухудшать цвет и качество дрожжей. Такой 20 - 45 % - ный раствор мелассы перекачивают в приточные мерные резервуары. Водные растворы солей ( обычно в соотношении 1: 10) перекачивают в отдельные приточные емкости. [26]
На этом же рисунке для сравнения приведена кривая изменения содержания ин-верта в растворе мелассы при контакте с катионитом. Из сравнения графиков видно, что инверсия сахарозы в растворе мелассы в присутствии HaSCh протекает несколько сильнее, чем при контакте с катионитом в Н - форме, но менее интенсивно, чем при тех же условиях в чистом растворе сахарозы. При 20 наблюдается увеличение инверта: в растворе мелассы при контакте с катионитом в 2 2 раза; в растворе мелассы в присутствии № SO4 - в 6 46 раза; в чистом растворе сахарозы в присутствии НзЗСЬ в - 32 4 раза. [27]
На этом же рисунке для сравнения приведена кривая изменения содержания ин-верта в растворе мелассы при контакте с катионитом. Из сравнения графиков видно, что инверсия сахарозы в растворе мелассы в присутствии HaSCh протекает несколько сильнее, чем при контакте с катионитом в Н - форме, но менее интенсивно, чем при тех же условиях в чистом растворе сахарозы. При 20 наблюдается увеличение инверта: в растворе мелассы при контакте с катионитом в 2 2 раза; в растворе мелассы в присутствии № SO4 - в 6 46 раза; в чистом растворе сахарозы в присутствии НзЗСЬ в - 32 4 раза. [28]
При адсорбции из нейтрального раствора основные, нейтральные и часть кислых аминокислот сорбируются катионитом, аспарагиновая и глютаминовая кислоты - анионитом. При сорбции из раствора с рН 3, где подавляется кислотная диссоциация, все аминокислоты извлекаются катионитом. Катионит КУ-2 кроме солей частично поглощает красители. Для отделения солей раствор мелассы обрабатывали слабокислотным катионитом КБ4 - П2, имеющим сродство к ионам кальция и плохо сорбирующим аминокислоты. Кислоту из элюата выпаривали, и полученные водные растворы аминокислот хроматографировали на бумаге. [29]
Таким образом освобождаются от вредной микрофлоры. К среде всегда добавляют источники фосфора, обычно в виде солей фосфорной кислоты, и другие минеральные вещества, например сульфат цинка, стимулирующий образование мицелия и биосинтез лимонной кислоты. Для активного синтеза лимонной кислоты в питательной среде кроме сахара должны содержаться 0 07 % азота, 0 016 - 0 021 % F Os, калий, магний, цинк и другие элементы в небольших количествах. Доказано, что количество азота, калия, магния, серы и железа в растворе мелассы достаточно велико, поэтому дополнительное введение их в среду излишне. [30]