Cтраница 2
Каплю туши помещают на хорошо обезжиренное смесью спирта с эфиром предметное стекло и смешивают с каплей жидкости, содержащей бактерии. При помощи покровного стекла распределяют мазок тонким слоем по поверхности предметного стекла. После того как препарат высохнет ( на воздухе), его рассматривают с иммерсионной системой микроскопа. На темно-дымчатом фоне ясно видны неокрашенные капсулы и клетки бактерий. [16]
В тех случаях, когда исследуемый препарат не желают подвергать излишнему освещению неразложенным светом источника, последний способ сочленения монохроматора с микроскопом более выгодный. Действительно, в этом случае через препарат будут проходить только монохроматические пучки, выделенные монохроматором. Эти пучки к тому же уже будут ослаблены в результате обычных потерь в оптической системе монохроматора и предшествующей части системы микроскопа. [17]
При распознавании эпидемического возвратного тифа следует учитывать смену лихорадочных приступов приступами апи-рексии, а также эпидемиологическую ситуацию. Самым достоверным методом исследования при возвратном тифе является обнаружение Borrelia recurrentis в толстой капле и в периферической крови с окраской по Романовскому-Гимзе. Применяются также метод висячей капли в темном поле и негативный метод выявления боррелий ло Бурри, для чего каплю крови смешивают с тушью на стекле, высушивают и смотрят под иммерсионной системой микроскопа - боррелий на темном фоне выделяются в виде светлых нитей. Проводится исследование мазков крови и отпечатков из органов методом серебрения. [18]
Объективный микрометр представляет собой специальное предметное стекло с размещенной на нем линейкой длиной в 1 мм, имеющей 100 делений, каждое из которых соответствует 10 мкм или 0 01 мм. Окулярный микрометр - это круглое стекло, которое помещают в окуляр микроскопа. На него также нанесена линейка длиной 0 5 или 1 см, разделенная соответственно на 50 или 100 делений. Величина одного деления этой линейки зависит от системы микроскопа, увеличения окуляра, бинокулярной насадки и пр. [19]
Для лабораторных занятий могут быть использова ны обычные дрожжи. Небольшой кусочек дрожжевой массы помещают за несколько часов до занятий в теплую подсахаренную воду и ставят в теплое место. Образуется беловатая мутная жидкость. На предметное стекло наносят каплю этой жидкости, закрывают покровным стеклом, наносят на него кедровое масло и просматривают препарат с иммерсионной системой микроскопа. Клетки хорошо видны и при меньших увеличениях. На многих клетках видны почки. В мелкозернистом содержимом живых дрожжей хорошо заметны крупные прозрачные вакуоли, занимающие иногда центральное положение. [20]
В контроле АГ к 0 2 мл физраствора добавляют одну каплю взвеси риккетсии; в контроле сыворотки смешивают 0 2 мл ее с одной каплей физраствора. После этого приступают к учету результатов реакции. Для этого пробирки в штативе осторожно встряхивают и из каждой, начиная с наибольшего разведения, по капле наносят с помощью пастеровской пипетки на предметное стекло. При диагностике риккетсиозов их распределяют в виде мазка с двухкопеечную монету. Мазки высушивают в термостате при 37 или при комнатной температуре, фиксируют смесью Никифорова или другим фиксатором и окрашивают краской Гимза. После этого препараты по очереди, начиная с контролей, устанавливают под иммерсионную систему микроскопа, просматривают и учитывают результаты микроагглютинации. [21]