Жидкая питательная среда

Cтраница 1

Схема заводского производства Bacillus thuringiensis. [1]

Жидкая питательная среда заливается в колбы на / 4 - Vs их объема и после стерилизации инокулируется смывом 5 - 7-дневной культуры с косого агара, где полностью закончилось спорообразование. Инокулированные колбы помещают на качалку на 48 часов при температуре 28 - 30 С и 105 оборотах в минуту. [2]

Жидкие питательные среды можно стерилизовать фильтрованием через свечи Шамбер-лена, асбестовые или стеклянные фильтры марки Schott G-5. Наиболее распространенным является фильтрование через специальные диски из смеси асбеста и клетчатки. [3]

При росте на жидких питательных средах одни виды спороносных бактерий образуют поверхностную плепку, другие - пет. Культуры бактерий, характеризующиеся образованием поверхностной пленки, при потере спорообразования лишаются этой способности. [4]

При постановке опыта: основная жидкая питательная среда для накопительной культуры без источника углерода, склянка с керосином или вазелиновым маслом, почвенный образец, колбы на 250 и 100 мл, цилиндр иа 100 мл, алюминиевая чанная ложка, вата для пробок, пипетки моровские на 1 мл. [5]

Плесневые грибы переносятся с плотных и жидких питательных сред на свежие плотные или жидкие среды бактериальной петлей. Прокалив бактериальную петлю, ее охлаждают и, захватив малое количество спор плесневых грибов из зрелой культуры, переносят их на плотную питательную среду в пробирке, проводя петлей по ее поверхности от нижнего края среды до верхнего. В жидкую среду погружают бактериальную петлю с захваченными ею спорами и помешивают для распределения высеваемого материала в жидкости. Засеянная питательная среда подвергается инкубации при надлежащей температуре. [6]

Выращивание пленки грибов на жидкой питательной среде для получения амилазы неприменимо, так как содержащийся в среде сахар превращается в органические кислоты, которые инактивируют амилазу. [7]

В краткосрочных опытах на жидкой питательной среде Чапека-Докса изучали Б динамике влияние фунгицидов ТФБА, трилана, мертиолата на активность неорганической пирофосфатазы плесневого грнба AspergUluS niger. При введении в питательную среду фунгицидов понижается актив-ио сть фермента в мицелии и повышается в культуральной жидкости. Наиболее сильное действие и в короткие сроки оказывает мертиолат, менее токсичен трилак, слабое влияние оказывает ТФБА. [8]

Глубинную культуру микроорганизмов выращивают на жидкой питательной среде при энергичной аэрации в герметически закрытых аппаратах и в стерильных условиях. Стерильность глубинной культуры микроорганизма - продуцента ферментов положительно отражается на результатах сбраживания сусла дрожжами. [9]

Чистую культуру следует поддерживать на жидкой питательной среде, причем нужно делать пересевы не позднее чем через 7 - 10 дней 3 - 5 мл инокулята. [10]

Осветлением называется коагуляция осадка в жидких питательных средах. Некоторые среды остаются мутными и после фильтрования их необходимо осветлить с помощью яичного белка. К 2 л питательной среды, охлажденной до 50 С, добавляют взбитый яичный белок, быстро все перемешивают и затем кипятят. После коагуляции белок оседает, осветляя жидкость, после чего его удаляют фильтрацией. [11]

Методом последовательных серийных разведений на плотных и жидких питательных средах проведены исследования антимикробных свойств цианида калия и чувствительности к нему 26 видов и разновидностей бактерий рода Bacillus. Показано, что состав среды оказывает существенное влияние на антимикробную активность KCN. Выявлены микроорганизмы с различной чувствительностью к цианиду калия в интервале концентраций 1 - 100 мг / л, которые могут быть использованы в качестве биоиндикаторов для определения K. [12]

При выращивании микроорганизмов в колбах используют только жидкие питательные среды. [13]

Полученный таким образом сок вводят в жидкую питательную среду в различных количествах, чтобы получить ряд разведений. На 100 мл питательной среды добавляют 4 0; 2 0; 1 0; 0 5; 0 25 мл сока, после чего, добавляя воду, доводят объем до 4 мл. Контролем служит питательная среда с 4 мл сока с контрольных растений. [14]

Для этого к культуре микобактерий на жидкой питательной среде добавляют 1 мл раствора KCNw. При наличии ниацина через несколько минут появляется ярко-желтое окрашивание. Для нейтрализации KCN после учета результатов в пробирки добавляют 3 - 5 мл 10 % - го раствора гидрокарбоната натрия. Для определения ниацина в экстрактах из агаровых культур используют также бумажные индикаторные полоски. [15]

Страницы: 1 2 3 4