Cтраница 2
Очищенные химические среды, использованные для разведения растительноядных гусениц, обычно содержат небольшое количество растения-хозяина или экстракта из него; обычно прибавляют целлюлозу в той или иной форме, чтобы сделать кормовую среду более приемлемой. [16]
Эта кормовая среда была видоизменена путем замены соевого белка ацетоновым экстрактом из коробочек хлопчатника и добавления двух веществ, подавляющих рост плесени. [17]
Если правильны представления Френкеля [725, 726] о том, что основные требования к корму одинаковы у большинства насекомых, то этим потребностям удовлетворяет большинство растений и только необычные химические вещества, содержащиеся в растениях, привлекают или отпугивают растительноядных насекомых, и использование искусственных кормовых сред должно упрощаться. Прибавление к кормовой среде, полностью покрывающей потребность в корме ( им могло бы служить почти любое растение, отвечающее физическим требованиям к корму) кормового аттрактанта, стимулирующего питание, должно удовлетворять требованиям насекомого к химическому составу корма. Нейтрализация или удаление веществ, отпугивающих насекомых из искусственного растительного корма, также должно обеспечить развитие насекомого. Нейтрализация факторов устойчивости растений-хозяев, возможно, осуществима, так как Бекк [130] доказал, что при относительно высоком содержании сахара в растениях кукурузы один из факторов ее устойчивости перестает препятствовать развитию гусениц стеблевого мотылька, хотя молодые гусеницы не нуждаются в сахарозе. Флешнер [706] считал, что отложение химикатов или пыли снижает устойчивость растения-хозяина против клещей. Основная теория Френкеля о том, что все клетки растения имеют одинаковый состав питательных веществ, требует более углубленной проверки, так как хотя растительные клетки могут иметь качественно одинаковый состав питательных веществ, но у потребляющих эти клетки насекомых могут возникать нарушения требующегося им равновесия питательных веществ в связи с количественными различиями в содержании этих веществ в клетках. [18]
Вслед за первоначальным составом среды, включающей бананы, были предложены различные варианты методики для массового разведения дрозофилы. Отказываясь от состава кормовой среды на агаровой основе, Ходсон и Чианг [965] в качестве корма для личинок использовали свежие дрожжи для теста. [19]
Для автоматической стерилизации самцов совок ( в частности, хлопковой совки) сконструированы ловушки с приманкой в виде ультрафиолетовых ламп или девственных самок. При разведении мух пупарии, лежащие в пять слоев, или кормовую среду со всплывшими пупариямн покрывали слоем рыхлого губчатого полистирола ( толщина 10 - 18 см), пропитанного 5 % - ным раствором ТЭФ в метиловом спирте или в 25 % - иой смеси ацето-нитрила с водой, а затем высушенного. [20]
В Гейнсвилле в качестве насекомых-тестеров для испытания хемостерилизаторов используют комаров, переносчиков желтой лихорадки. Для этого 50 или 100 взрослых комаров Aedes aegypti помещают в садки размером 20X20x25 см. Комары получают кормовую среду, содержащую 1 % испытуемого химического вещества в растворе сахара. Никакой другой пищи они не получают. Через 4 дня после массового вылета самки комаров дают кровь, а яйца собирают на увлажненные фильтры в маленьком лабораторном стакане. [21]
Открытия были основаны на исследованиях того же набора легкоразводимых видов насекомых, однако среди них не было настоящих растительноядных видов и энтомофагов. Тем не менее в течение этого периода было установлено, что почти все витамины группы В, необходимые для высших животных, нужны и в кормовых средах для большинства насекомых при отсутствии в этих средах микроорганизмов. Были завершены первые исследования по замене всего белка аминокислотами, и стало ясно, что 10 аминокислот, необходимых для роста насекомых, аналогичны жизненно важным аминокислотам и для высших животных. Для немногих насекомых была доказана необходимость некоторых жирных кислот и полностью установлен химический состав среды, обеспечивающей рост личинок дрозофил. [22]
Тахина Agria affinis - паразит листовертки-почкоеда Choristoneura fumiferana ( Clem. Хоузе и Траер [996] установили, что три весовых части свиной печени и одна часть рыбы ( лосось или зубатка), измельченные в мясорубке и перемешанные до мягкой пастообразной консистенции, служили превосходной кормовой средой для разведения этого насекомого. [23]
После этих первых кормовых сред, которые использовали в основном для размножения насекомых-вредителей запасов зерна, были достигнуты некоторые успехи и в разведении растительноядных насекомых на искусственных кормовых средах. Эти опытные кормовые среды еще не позволяют непосредственно применить их для массового размножения насекомых, но обогащают знания о химических и физических свойствах корма, необходимых для роста и развития насекомых. Поэтому возможна замена химически чистых веществ более дешевыми кормовыми средствами, которые отвечали бы химическим и физическим требованиям к корму. Метод использования гомо-генатов и вытяжек из природных растений-хозяев и храпения этих продуктов при низких температурах успешно применялся для размножения некоторых растительноядных насекомых, растения-хозяева которых доступны только в определенное время года. [24]
На искусственных средах размножали гусениц некоторых бабочек, питающихся в естественных условиях тканями растений, в особенности те виды, гусеницы которых вбурав-ливаются в ткани растений. Большинство требований к пище было определено для гусениц трех видов, живущих внутри растений, путем использования агаровой среды при стерильных условиях. Некоторые виды разводили на кормовой среде, состоящей в основном из растений-хозяев, обычно из мелко нарезанных и смешанных листьев. [25]
Другой подход, связанный со скармливанием хемостерилизато-ров, заключается в введении хемостерилизатора в природный корм насекомых или в его внешнюю среду. Хеннеберри и др. [67] и Крей-гтон и др. [32] на 48 часов помещали листоедов Diabrotica balteata среди листьев листовой капусты, окуная их предварительно в раствор хемостерилизатора. Чемберлен [23] успешно снижал плодовитость мясных мух Cochliomyia hominivorax, давая кормовую среду, обработанную стерилизатором, личинкам I и II возраста. [26]
Если желателен медовый корм более плотной консистенции, то его можно приготовить, смешивая агар с различным количеством сахара и меда. Нанося щеткой капельки указанной медо-агаровой смеси на плотную бумагу в начале затвердевания смеси, можно получить удовлетворительную кормовую среду при относительной влажности до 40 %, но при влажности воздуха 40 - 70 % необходимо прибавлять 10 г тростникового сахара к указанной медо-агаровой смеси; если же относительная влажность колеблется в пределах 50 - 90 %, необходимо прибавлять 25 г сахара. [27]
Часто практичнее проводить отбор химикатов, используя другие стадии развития, а не взрослых насекомых, или определять эффективность действия химикатов на другие стадии развития. В Гейнсвилле потенциальные хемостерилизаторы оценивают также и по их действию на молодых комнатных мух. Для этого 25 г сухого корма для личинок смачивают 25 мл воды, затем 40 яиц помещают на мокрый лоскут черной ткани, с которого их смывают 15 мл воды во влажную кормовую среду. Через 72 часа 25 мл воды, содержащей 0 25 г раствора или суспензии химиката, выливают в кормовую среду. Через 24 часа определяют состояние личинок в среде. [28]
В настоящее-время, возможно, наиболее целесообразными для массового разведения растительноядных гусениц являются искусственные среды, приготовленные главным образом из тканей натурального растения-хозяина. Нормально потребляемые части растения измельчают, перемешивают и в большинстве случаев стерилизуют в автоклаве. Во многих случаях до внесения в кормовую среду яйца бабочек стерилизуют химически. [29]
Вслед за первоначальным составом среды, включающей бананы, были предложены различные варианты методики для массового разведения дрозофилы. Отказываясь от состава кормовой среды на агаровой основе, Ходсон и Чианг [965] в качестве корма для личинок использовали свежие дрожжи для теста. Бартлетт [ ПО ] обнаружил, что консервированные тыквы оказались хорошей кормовой средой для личинок, если слой тыквы около 5 см толщиной клали на дно четырехлитровой стеклянной банки; куски бумаги, спущенные вниз по внутренним стенкам банок, служили местами окукливания. [30]