Суспензия - дрожжи
Cтраница 2
Аэрирование сусла возможно и целесообразно в самом начале процесса, чтобы быстрее наросла биомасса клеток для ведения последующего анаэробного процесса. Количество привносимой в сусло суспензии дрожжей обычно составлет 1 % по объему. [16]
В куль-туральной жидкости возможно образование коагуляционно-тиксотроп-ных структур, характеризующихся пластичностью, связанной с взаимопревращениями золя и геля. Как и для большинства псевдопластичных жидкостей, для суспензий дрожжей справедливо уравнение т ky, где п - показатель степени неньютоновского поведения; 7 - скорость сдвига; т - напряжение сдвига. [17]
Однако показано, что подобное восстановление осуществляется также бактериями, высшими растениями и в организмах животных. Обратная реакция - дегидрирование спиртов - лучше всего идет при действии бактерий: в случае этилового спирта, глицерина и сорбита - бактерий уксуснокислого брожения, в случае стероидов - с помощью corynebacte-rium, выделенной из суспензии дрожжей. [18]
Периодически гидролизный завод останавливают на планово-предупредительный или капитальный ремонт. В это время дрожжи следует сохранять в живом виде. Для этого суспензию дрожжей при помощи сепараторов сгущают и заливают холодным древесным суслом. При низкой температуре брожение резко замедляется и дрожжи потребляют значительно меньше сахара. [19]
 |
Зависимость степени осветления суспензии клеток Е. со / г от содержания в системе полиэтиленоксида ( 1, полиакриламида ( 2, сополимеров ЭХГ / ОЭ-1 ( 3 иЭХГ / ОЭ-2 ( 4. [20] |
В отличие от природных, синтетические неионогенные полимеры, используемые в водоочистке, угле - и рудообогащении, нефтедобыче и др., в практике флокуляции биоколлоидов не нашли практического применения из-за низкой эффективности агрегирования суспензий микроорганизмов. Например, в работе [112] показано, что неионогенные ПОЭ, ПАА, ПВС и ПВП не оказывают заметного влияния на агрегативную устойчивость суспензий E. Аналогичные данные известны и для суспензий дрожжей, споровых культур, грибов. [21]
Так, например, хроматографически трудно отделить фруктозу от сорбозы или глюкозу от галактозы. В таких случаях испытуемый раствор параллельно хроматографируют на двух полосках бумаги, одну из которых после разделения проявляют химическим путем, а вторую опрыскивают суспензией дрожжей ( Д 40) и инкубируют во влажной атмосфере. Спустя определенное время, хроматограмму высушивают и проявляют. [22]
Полученную жидкую массу подкисляют, добавляя на каждые 10Q л автолизата 0 25 л концентрированной серной кислоты, которую предварительно разбавляют в 4 раза. После этого авто-лизат кипятят 15 - 20 мин. После охлаждения он готов к употреблению. Кроме белкового гидролиза в дрожжевом автолизате могут идти и другие побочные процессы - декарбоксилирование кетокислот, образование аминокислот из кетокислот, спиртовое брожение и др. После автолиза 10 - 12 % ( по сухой массе) суспензии дрожжей в течение 24 ч при 45 С в жидкой фракции автолизата содержится до 5 % сухих веществ. Из общего количества азота фильтрата 50 % приходится на аминный азот аминокислот тирозина, триптофана, метионина, цистеина, аргинина, гистидина и др. Кроме того, в фильтрат переходят витамины группы В - тиамин, витамин РР и др. Добавки жидкого автолизата к питательным средам определяются экспериментально. [23]
Много эргостерина содержится в мицелии плесневых грибов Aspergillus и Penicillium. Суммарное количество стеринов в мицелии составляет 1 2 - 1 4 % в пересчете на сухое вещество, эрго-стерин составляет 80 % всего количества стеринов. Из дрожжей или мицелия плесневых грибов витамин D2 получают в кристаллическом виде или в виде масляного концентрата. Для кормовых целей используют также сухие облученные дрожжи, изготовляемые на заводах кормовых дрожжей. Хорошие результаты дает облучение 5 % - ной жидкой проточной суспензии дрожжей в тонком слое в специальных центробежных аппаратах или аппаратах полочного типа при помощи ультрафиолетовых ламп. Возможно также облучение сухих дрожжей на транспортере в тонком слое. [24]
Страницы: 1 2