Растительная ткань

Cтраница 2

Исследуемую растительную ткань измельчают, просеивают, отбирают фракцию опилок размером 0 2 - 2 мм и подсушивают до воздушносухого состояния. Перед анализом определяют влажность пробы. [16]

Многие растительные ткани флуоресцируют в ультрафиолетовом свете; однако только ткани, содержащие хлорофилл, бактериохлоро-филл или фикобилины, обнаруживают слабую красную или оранжевую флуоресценцию при освещении видимым светом. Флуоресценция фико-билинов ( в сине-зеленых и красных водорослях) ярче, чем у хлорофилла, вследствие большей ее интенсивности, а также вследствие того, что глаз обладает большей чувствительностью к оранжевому свету, чем к красному. Среди зеленых растений водоросли дают флуоресценцию более яркую, чем наземные растения, вследствие того, что рассеяние света, мешающее наблюдению флуоресценции, в пропитанных водой слоевищах водорослей значительно слабее, чем в листьях, наполненных воздухом. [17]

Гидролиз растительных тканей концентрированными кислотами ( в отличие от описанного выше гидролиза разбавленными кислотами) протекает при нормальной температуре. При этой температуре соляная кислота концентрацией более 40 % и серная концентрацией более 65 % обладают способностью растворять все полисахариды растительной ткани и превращать их в растворимые в воде низкомолекулярные декстрины. Моносахариды в этих условиях ввиду дегидратирующего действия концентрированных кислот, как правило, образуются в сравнительно небольших количествах. [18]

Навеску растительной ткани ( 0 5 1 г) берут на аналитических весах. Ре тщательно растирают в ступе с фосфатной буферной смесью, затем количестнснпо переносят в мерную колбу на 50 мл и доводят буфером до метки. [19]

Экстракция растительных тканей является довольно сложной процедурой. [20]

Установка для нагревания на водяной бане с обратным холодильником. [21]

Навеску растительной ткани около 5 г, взвешенную с точностью 0 0002 г, помещают в коническую колбу вместимостью 500 мл, приливают 200 мл. Через 3 ч нагревание прекращают, содержимое реакционной колбы фильтруют на воронке Бюхнера через бумажный фильтр. Остаток на фильтре ( целлолигнин) промывают горячей водой до отрицательной реакции на кислоту по метиловому оранжевому ( фильтровальная бумажка, смоченная раствором метилового оранжевого, в присутствии кислоты розовеет от одной капли фильтрата) и сохраняют для определения в нем трудногидролизуемых полисахаридов. [22]

Остаток растительной ткани считают лигнином. Экстрактивные вещества удаляют путем обработки пробы спиртобензольной смесью в экстракционном аппарате ( см. с. Для удаления полисахаридов их гидролизуют сначала 72 % - ной серной кислотой, а затем разбавленной кислотой при нагревании. Остающийся лигнин высушивают до полного удаления влаги и вычисляют его содержание в исследуемой абсолютно сухой растительной ткани. [23]

Навеску растительной ткани извлекают петролейным эфиром, подвергают ацетонитрильной очистке и производят щелочной гидролиз акарицида до 2 5-дихлортиофенола. Отогнанный фенол бромируют и превращают в цианид, который и определяют фотометрически после образования комплекса с пиридин-бензидиновым реактивом. [24]

Го-могенат растительной ткани извлекают хлороформом, остаток после выпаривания растворителя подвергают щелочному гидролизу и после подкисления опять извлекают хлороформом. Последующая реакция приводит к развитию стабильного окрашивания с максимумом поглощения при 590 ммк. Оптимум определения - 5 - 40 мкг севина в образце. [25]

Изменения растительных тканей в процессе тепловой обработки сырья рассмотрим в том порядке, в каком они совершаются в производстве. [26]

Мацерация растительных тканей вызывается термолабильными компонентами нативной культуральной жидкости, предположительно экзоферментами паразита. [27]

Срезы растительных тканей обрабатывают в течение 10 мин. После этого к раствору прибавляют 2 капли 2 5 % - ного раствора иода в растворе йодистого калия и 11 капель свежеприготовленной иодистоводородной кислоты. Лигнин при этом окрашивается в красный цвет, а целлюлоза - в фиолетовый. [28]

Содержание Сахаров в овощах. [29]

В растительной ткани глюкоза и фруктоза находятся в свободном и связанном состоянии. Глюкоза-декстроза, или виноградный сахар, является составной частью сахарозы, полисахаридов - крахмала, целлюлозы, гемицеллюлозы, а также многих глюкозидов. Фруктоза-левулеза, или плодовый сахар, входит в состав сахарозы и полисахарида инулина. [30]

Страницы: 1 2 3 4