Cтраница 2
Тонкостенную капиллярную трубку длиной около 40 мм с внутренним диаметром 2 - 3 мм осторожно запаивают с одной стороны так, чтобы на дне капилляра не образовалось толстой капли стекла. Капилляр взвешивают на микровесах и вводят в него вещество при помощи открытой с обеих сторон более узкой капиллярной трубки и стеклянной нити. Для этого в один из открытых концов узкой капиллярной трубки набирают 0 2 - 1 мг вещества, тщательно обтирают ее снаружи, вводят в широкий капилляр и выталкивают вещество стеклянной нитью, как показано на рис. 243 а. [16]
![]() |
Криоскопические постоянные ( К некоторых веществ, пригодных для микро - или полумикроопределения молекулярного веса. [17] |
Тонкостенную капиллярную трубку длиной около 40 мм с внутренним диаметром 2 - 3 мм осторожно запаивают с одной стороны так, чтобы на дне капилляра не образовалось толстой капли стекла. Капилляр взвешивают на микровесах и вводят в него вещество при помощи открытой с обеих сторон более узкой капиллярной трубки и стеклянной нити. Для этого в один из открытых концов узкой капиллярной трубки набирают 0 2 - 1 мг вещества, тщательно обтирают ее снаружи, вводят в широкий капилляр и полностью выталкивают вещество стеклянной нитью на дно широкого капилляра, как показано на рис. 162, а. [18]
Тонкостенную капиллярную трубку длиной около 40 мм с внутренним диаметром 2 - 3 мм осторожно запаивают с одной стороны так, чтобы на дне капилляра не образовалось толстой капли стекла. Капилляр взвешивают на микровесах и вводят в него вещество при помощи открытой с обеих сторон более узкой капиллярной трубки и стеклянной нити. Для этого в один из открытых концов узкой капиллярной трубки набирают 0 2 - 1 мг вещества, тщательно обтирают ее снаружи, вводят в широкий капилляр и выталкивают вещество стеклянной нитью, как показано на рис. 176, а. Капиллярную трубку со стеклянной нитью вынимают и тщательно стряхивают на дно широкого капилляра все частички вещества, приставшие к его стенкам. [19]
Исследование кожи можно проводить методом Миллера: у больного берут пять кусочков кожи, сильно сдавливают их, чтобы получить тканевую жидкость и кровь, из которых готовят препараты толстой капли. [20]
В методе Раста тонкостенную капиллярную трубку 3 ( рис. 226, б, изображение увеличено) длиной около 40 мм с внутренним диаметром 2 - 3 мм запаивают с одной стороны, чтобы на дне капилляра не образовалось толстой капли стекла. Капилляр взвешивают на микровесах ( см. разд. При помощи стеклянной нити 7 выталкивают вещество 6 на дно этого капилляра. Если нужно, операцию повторяют до тех пор, пока в капилляре не будет 0 2 - 1 0 мг вещества. Снова взвешивают заполненный капилляр и заплав-ляют его в месте перетяжки 4, вытягивая сплавленный конец в тонкую нить 7 длиной 40 - 50 мм. [21]
Предметным стеклом касаются выступившей капли крови, затем углом другого предметного стекла размазывают каплю до нужного диаметра и толщины. Можно делать четырехугольную толстую каплю ( способ Walker), при этом форменные элементы крови и паразиты распределяются более равномерно, чем в обычной толстой капле, где середина толще краев. [22]
Диагноз основывается на клинико-эпидемиологических данных. Готовят несколько препаратов толстой капли, окрашивают по Романовскому - Гимзе и микроско-пируют. Производится также микроскопия в темном поле зрения толстой капли без окраски. Последний метод видоизменен Бурри, предложившим рассматривать толстую каплю в смеси с каплей черной туши под иммерсией. Спирохемы в этих случаях хорошо заметны, так как тушью не окрашиваются. Иногда используют биологический метод внутрибрюшин-ного заражения животных - морских свинок, белых мышей, песчанок. [23]
Вначале окрашивают препарат толстой капли, так как при его исследовании больше вероятности получить положительный результат. На высушенный нефиксированный препарат капли крови наливают на 35 - 45 мин краситель Романовского - Гимзы, затем препарат осторожно промывают водой и высушивают. Под микроскопом боррелии имеют вид тонких нитей сине-фиолетового цвета с несколькими большими неравномерными завитками ( см. цв. [24]
При подозрении на хлорохинустойчивую малярию возникает необходимость учитывать количественное содержание паразитов в крови до начала и в процессе лечения. Для этого исследуют толстую каплю: подсчитывают общее число лейкоцитов и плазмодиев, расположенных в поле зрения, учитывают общее число возбудителей, приходящихся на 200 лейкоцитов, и делают перерасчет на 1 мл в зависимости от содержания лейкоцитов в указанном объеме крови путем составления пропорции. Исследование крови на лейкоцитоз и определение количественного содержания плазмодиев следует проводить синхронно, иначе результаты будут искаженными. [25]
Кровь на наличие плазмодиев малярии исследуют как во время лихорадки, так и при нормальной температуре тела. Микроскопируют мазок и толстую каплю крови, окрашенные методом Романовского - Гимзы. [26]
При распознавании эпидемического возвратного тифа следует учитывать смену лихорадочных приступов приступами апи-рексии, а также эпидемиологическую ситуацию. Самым достоверным методом исследования при возвратном тифе является обнаружение Borrelia recurrentis в толстой капле и в периферической крови с окраской по Романовскому-Гимзе. Применяются также метод висячей капли в темном поле и негативный метод выявления боррелий ло Бурри, для чего каплю крови смешивают с тушью на стекле, высушивают и смотрят под иммерсионной системой микроскопа - боррелий на темном фоне выделяются в виде светлых нитей. Проводится исследование мазков крови и отпечатков из органов методом серебрения. [27]
Выявление и подсчет телец Гейнца производят либо в мазках ( Я - Я - Соколовская, 1948), либо в толстой капле крови. Количественная оценка содержания телец Гейнца возможна лишь в мазке крови. [28]
Предметным стеклом касаются выступившей капли крови, затем углом другого предметного стекла размазывают каплю до нужного диаметра и толщины. Можно делать четырехугольную толстую каплю ( способ Walker), при этом форменные элементы крови и паразиты распределяются более равномерно, чем в обычной толстой капле, где середина толще краев. [29]
Диагноз основывается на клинико-эпидемиологических данных. Готовят несколько препаратов толстой капли, окрашивают по Романовскому - Гимзе и микроско-пируют. Производится также микроскопия в темном поле зрения толстой капли без окраски. Последний метод видоизменен Бурри, предложившим рассматривать толстую каплю в смеси с каплей черной туши под иммерсией. Спирохемы в этих случаях хорошо заметны, так как тушью не окрашиваются. Иногда используют биологический метод внутрибрюшин-ного заражения животных - морских свинок, белых мышей, песчанок. [30]