Cтраница 2
При озолении мокрым путем растительных образцов, содержащих много минеральных примесей, возможны существенные ошибки за счет растворения многих компонентов примесей. Из минеральных частиц в раствор переходит большое количество Al, Fe, Si, несколько меньшее - Са и Mg. Так как содержание первых трех элементов в растениях мало, то растворение минеральных частиц приводит к резкому завышению результатов определения этих элементов. В связи с изложенным ясно, что мокрое озоление таких объектов, как лесная подстилка или степной войлок, количество примесей з которых доходит до 20 - 40 %, совершенно недопустимо. [16]
Количество гербицида в растительных образцах находят по калибровочной кривой, которую получают в результате сплавления определенных количеств химически чистых галоидфенокси-кислот с солянокислым пиридином и проведения всех описанных операций. [17]
При взятии и подготовке почвенных и растительных образцов для анализа на содержание микроэлементов следует избегать загрязнения проб. [18]
Для определения фозалона в растительном образце измельченную пробу листьев ( 250 см2) или яблок ( 100 - 200 г) экстрагируют бензолом. Фильтруют экстракт через бумажный фильтр в кругло-донную колбу с нормальным шлифом и отгоняют растворитель досуха. Сухой остаток растворяют в 5 мл этанола и фильтруют в делительную воронку. Колбу и фильтр 4 раза промывают этанолом, используя каждый раз его по 5 мл. Вливают 2 мл 0 5 N раствора едкого натра для гидролиза фозалона, встряхивают и оставляют на 1 час. Затем вливают 75 мл 6 - 7 % - ного раствора сульфата натрия и 50 мл циклогексана. Оставляют воронку для разделения слоев. Водную фазу сливают в сухую чистую колбу, а циклогексановый слой - в отходы. Снова переносят водный экстракт в делительную воронку, добавляют 25 мл циклогексана и встряхивают в течение 1 мин. В случае необходимости промывание водно-спиртового раствора повторяют еще раз. К прозрачному раствору добавляют 2 мл соляной кислоты ( 1: 1), 25 мл циклогексана и встряхивают 1 мин. Промывают подкисленный водно-спиртовой раствор циклогексаном 3 - 4 раза, пока циклогексан будет бесцветным и прозрачным. Переносят водно-спиртовый слой в делительную воронку, добавляют 2 мл 1 5 % - ного раствора сульфата меди и 20 мл циклогексана. [19]
При определении влажности в растительных образцах режим работы прибора строится таким образом, чтобы образцы растений не подвергались воздействию атмосферной влаги в течение всего времени, которое требуется для анализа. Кроме того, нагрев образцов производится в атмосфере инертного газа, когда, следовательно, химические превращения в образцах растений или вовсе не происходят, или происходят в таких ограниченных размерах, которые не могут оказать влияния на результаты анализа. Благодаря быстрой подготовке образцов к анализу и благодаря тому, что в процессе этой подготовки растения не деформируются ( растения целиком поступают в анализ), можно ручаться за то, что первоначальная величина влажности растений не искажается ни за счет потери влаги в атмосферу, ни за счет обводнения образцов атмосферной влагой. [20]
Описаны приемы взятия и подготовки почвенных и растительных образцов для анализа с учетом специфики определения микроэлементов. Приведены краткие характеристики и даны марки размольных машин и мельниц, которые могут быть использованы при подготовке образцов при массовых определениях микроэлементов. Подробно описаны наиболее употребительные способы разложения почв применительно к определению отдельных микроэлементов. Предусматривается возможность взаимозамены способов разложения почв. Приведены способы сухого и двух вариантов мокрого озоления растительного материала, а также способ озоления органического вещества парами азотной кислоты. Отмечены их преимущества и недостатки. [21]
Суть его заключается в том, что растительные образцы отбирают около стационарных площадок количественного учета. При этом пробную площадку очередного срока учета обязательно располагают на новом месте, но не ближе 1 м как от площадок предыдущих учетов, с которых удалены растения, так и от стационарной площадки. С этой целью местоположение таких скользящих площадок для каждого срока учета фиксируют на схеме относительно стационарных площадок. В краткосрочных опытах это полностью исключает возможность повторного отбора образцов растений с одной площадки в течение сезона, а в длительных опытах позволяет избежать возвращения скользящих площадок на прежнее место ранее чем через 2 - 3 года. [22]
Было предложено определять ДДТ в бензольном экстракте растительных образцов по хлору после его отщепления путем 16-часовой инкубации при 45 с безводным растворим аммиака в метиловом спирте. [23]
Для определения извлечения диброма ( в процентах) из растительного образца к необработанному образцу добавляют определенное количество инсектицида и проводят полный анализ. Данный метод позволяет определять около 80 % диброма для большинства культур. [24]
Иногда необходимо определить все формы углеводов, содержащихся в данном растительном образце. [25]
На рис. 1 приведены спектры поглощения аденина, гуанина и анализируемого растительного образца в ультрафиолетовой области спектра. [26]
Таким образом, для полного количественного определения всех аминокислот в растительных образцах их необходимо хроматографировать в нескольких растворителях. [27]
Чикле и цис - и mpowc - полиизопрены, полученные из растительных образцов. [28]
Чувствительность энзиматиче-ского метода определяется величиной кажущегося содержания систокса, полученного для необработанных растительных образцов, и зависит от типа анализируемой культуры. [29]
Лейн ( Lane, 1958) предложил другой, более совершенный способ для анализа растительных образцов, основанный на окислении слергоном дифенил-тг-фенилендиамина до его соли, окрашенной в синий цвет. Соль можно извлечь в водную кислую фазу при обработке смеси, в которой производилось окисление бензолом и раствором уксусной и соляной кислот. Требуется проведение холостого анализа с заведомо незагрязненным образцом и учет полученной поправки в конечном результате. [30]