Агаровая пластинка

Cтраница 3

В зависимости от количества анализируемых образцов число и схема расположения лунок в агаровой пластинке могут варьировать. [31]

При изучении антимикробного спектра при помощи хроматографии на бумаге повторные хроматограммы накладывают на агаровые пластинки, засеянные различными тест-микробами. Одинаково расположенные зоны подавления различных тестов свидетельствуют о широком спектре действия вещества. [32]

Схематизированная кривая размножений бактерий в культуре. / - лагфаза, Л - логарифмическая фаза, III - стационарная фаза, 1 V - фаза отмирания ( М - число бактерий. [33]

Для определения количества клеток ( числа популяций) в единице объема бактериальной культуры ( или в любом исследуемом продукте) применяют различные методы: счет колоний, выращиваемых на агаровых пластинках в чашках Петри, прямой счет клеток под микроскопом, приемы нефелометрии и фотометрии. [34]

Для определения эффективности работы стерилизатора в обеззараженные биотесты и контрольный тест ( без стерилизации) стерильно вносят по 5 мл питательной среды, инкубируют при 55 С в течение 7 суток при ежедневном просмотре посевов, делая высевы на агаровые пластинки, из проросших емкостей. [35]

Агаровые пластинки, засеянные сенной или кишечной палочкой, заливают 0 05 % - ным водным раствором 2 3 5-трифенилтетразолий хлорида. При этом зоны подавления тест-микроба остаются бесцветными, тогда как газон бактерий окрашивается в красный цвет вследствие восстановления индикатора. В случае 2 6-дихлорфенолиндофенола поступают точно так же, но используют 0 5 % - ный водный раствор и время инкубации при 37 составляет 5 - 20 мин. При этом фон остается бесцветным, а зоны подавления окрашиваются. Используют также смесь равных объемов 0 1 % - ного раствора 2 3 5-трифенилтетразолий хлорида и 1 % - ного раствора 2 6-дихлорфенолиндофенола. [36]

Известен метод изучения фунгицидной активности летучих веществ. Поверхность агаровой пластинки инфицируют одним из приведенных выше способов, после чего чашки перевертывай и на их крышки помещают определенную навеску препарата. В перевернутом состоянии чашки Петри помещают в оптимальные условия для развития гриба. Учет проводят, когда в контрольной чашке обнаружат заметный рост гриба. Фумигационное действие препарата характеризует величина минимальной концентрации, вызывающей полное подавление роста гриба. [37]

Во время окрашивания слой агара отклеивается от стекла. После того как отделившиеся агаровые пластинки окрасятся, их помещают на стекло и высушивают при комнатной температуре. [38]

После элюирования агаровый гель сверху покрывают листом фильтровальной бумаги соответствующего размера, смоченным дистиллированной водой, и высушивают в термостате при 37 С. После полного высушивания агаровой пластинки покрывающую ее фильтровальную бумагу отклеивают, смочив несколькими каплями дистиллированной воды, и затем окрашивают сухую пленку агара в той же чашке Петри, в которой была поставлена реакция. [39]

Отмывающий раствор: смешивают 830 мл дистиллированной воды, 20 мл уксусной кислоты и 150 мл глицерина. После окрашивания в течение 5 ч агаровые пластинки отмывают, меняя каждые 20 мин отмывающий раствор, пока не содержащие белка участки агара не освободятся от красителя. [40]

Камеру с агаровыми пластинками закрывают крышкой и включают ток. Если напряжение, измеренное на краях агаровой пластинки, достигает 45 В, то электрофоретическое разделение белков закончится уже через 45 - 60 мин. [41]

Из обогащенной культуры, полученной путем нескольких последовательных пересевов пленки в свежие порции стерильной среды, производят высев с разведениями на среду того, же состава с добавкой 1.5 % агар-агара. Через 3 - 5 дней на агаровых пластинках появляются мелкие колонии 1 - 1.5 мм в диаметре, белые от выпавшей серы. Из выросших на твердой среде колоний производят массовый отсев в количестве 80 - 100 штук в пробирки со скошенным агаром. Когда через несколько дней в пробирках появляется рост по штриху, то в каждую пробирку вносят 2 - 3 мл стерильной жидкой питательной среды того же состава. Появление пленки серы на поверхности жидкости в пробирках указывает на хороший рост Th. Содержимое этих пробирок переносят стерильной пипеткой в колбы & жидкой средой и сразу же производят проверку на чистоту культуры путем высева на МПА и картофельный агар, так как именно на этих средах хорошо растут сопутствующие микроорганизмы. [42]

Если какой-то тип фага способен вызывать на агаре появление маленьких темных пятен, а другой тип фага образует большие светлые пятна, то мы получим в потомстве, кроме родительских типов, также и реком-бинантов, создающих большие темные и маленькие светлые пятна на агаре ( фиг. Различия в окраске обусловлены тем, что агаровая пластинка содержит смесь двух культур бактерий; при этом фаг одного типа вызывает появление темных пятен, так как он способен поражать и разрушать оба типа бактерий; другой же фаг может поражать только одну бактерию, и поэтому пятна остаются как бы полусъеденными и имеют более светлую окраску. [43]

У бактериофагов особенно легко выявляются такие мутанты, которые связаны с приобретением или утратой способности поражать некоторые типы бактерий. Если, например, бактериальную культуру, расположенную на агаровой пластинке, покрыть суспензией фаговых частиц, которые, вообще говоря, не способны поражать данный бактериальный штамм, то с большей частью агаровой пластинки ничего не произойдет. Однако в некоторых местах можно будет обнаружить круглые светлые дыркл ( стерильные пятна или бляшки), которые образовались вследствие того, что бактерии под действием фага подверглись лизису. Лизис в свою очередь был вызван тем, что произошла спонтанная мутация, в результате которой определенная фаговая частица и все ее потомки стали вирулентными. Этот новый штамм можно выделить, если взять фагов из того места, где обнаружено пятно. [44]

Выделение антагонистов может производиться различными методами: 1) обогащением почвы, 2) бактериальных агаровых пластинок, 3) прямого засева почвы, 4) скученной популяции на агаровой пластинке. [45]

Страницы: 1 2 3 4