Cтраница 1
Аминокислотный анализ обычно проводят при помощи автоматического анализатора аминокислот. [1]
Аминокислотный анализ показал, что полипептид состоит из остатков следующих аминокислот: глицина, аланина, валина, лейцина ( изолейцина), серина, треонина, аспарагиновой и глутаминовой кислот, аргинина, лизина и гистидина, а N-концевой аминокислотой, как это удалось установить с помощью метода Эдмана, является аспарагин. [2]
Аминокислотный анализ только в последние годы стал достаточно точным для использования его в качестве критерия при установлении состава белка. При внимательном просмотре литературы, посвященной аминокислотам, обнаруживается, что в тех случаях, когда два или большее число исследователей анализировали один и тот же белок, предварительно проверяя применяемый метод с помощью достаточного числа контрольных анализов, то они нередко получали для некоторых аминокислот различные значения. [3]
Аминокислотный анализ выявил 230 остатков, причем свободных SH-групп не обнаружено. Следует отметить, что в отличие от других полипептидов из яда кобр в факторе роста нервов хроматографически установлено наличие аминосахаридов и 6 % гексоз. Ферментативной активностью этот фактор не обладает. [4]
Аминокислотные анализы водных экстрактов образцов лунного грунта, проведенные в рамках американской программы Аполлон, показали присутствие глицина и аланина. Еще четыре аминокислоты были обнаружены с помощью газовой хроматографии в кислотном гидролизате экстракта. Спектроскопические данные одиозиачио показывают присутствие NH3, НСНО и HCN в космическом пространстве. Возможно, правда, что часть предшественников аминокислот происходит от газов земных ракет. [5]
При автоматическом аминокислотном анализе применяют другой способ стандартизации. [6]
![]() |
Полуавтоматический аминокислотный анализатор фирмы Mikro. [7] |
После автоматизации аминокислотного анализа дальнейшие усилия были направлены на ускорение анализа все возрастающего числа образцов. Автоматические приборы, способные быстро выдавать результаты анализа, принесли огромную пользу в клинической биохимии, однако в настоящее время потребности в таких приборах полностью удовлетворены. Однако по-прежнему необходимы несложные и вместе с тем универсальные анализаторы, которые можно легко трансформировать для выполнения разнообразных анализов. [8]
В результате количественного аминокислотного анализа и определения оптической изомерии аминокислот, входящих в состав полимиксинов и октапептинов, установлено, что некоторые из аминокислот присутствуют в одном и том же антибиотике как в L -, так и D-форме, например в полимиксинах А и Е, октапептинах А, В, С и D. В полимикси-нах и октапептинах наряду с аминокислотами имеется один остаток жирной кислоты. [9]
Поскольку при аминокислотном анализе желательно иметь значения количеств компонентов в молях, а данные ГХ-анализа дают весовые проценты, необходим соответствующий пересчет. Общая точность аналитических данных часто составляет 10 %, так как сюда входят ошибки, обусловленные предварительными препаративными стадиями работы. [10]
В настоящее время аминокислотный анализ белков, белковых пишевых веществ и органов имеет чрезвычайно большое значение, как метод исследования. [11]
При истолковании данных аминокислотного анализа важно помнить, что степень точности анализа налагает весьма жесткие ограничения на возможность определения стехиометрических соотношений аминокислот. Для того чтобы сделать надежные выводы, нужно располагать аналитическими данными, полученными с такой точностью, которая позволит правильно рассчитать число остатков каждой из аминокислот, входящей в состав белка. [12]
В процессе развития аминокислотного анализа состав нин-гидринового реагента неоднократно подвергался изменениям, однако основные принципы, заложенные в первых работах Мура и Стайна [10, 33], остались неизменными. Основу буфера составляет концентрированный раствор ацетата натрия с рН 5 0, что является оптимальным для полноты реакции и измерения поглощения. Водный раствор метилцеллозольва обеспечивает хорошую растворимость как органических соединений, так и неорганических солей. Реагент готовят и хранят в отсутствие кислорода воздуха, например в атмосфере азота. [13]
Авторы сопоставили результаты аминокислотного анализа не только чистых белков, но и различных кормов с высоким содержанием углеводов при использовании такого режима и традиционным методом ( 110; 24 ч); результаты оказались примерно одинаковыми. [14]
Хроматографические колонки для аминокислотного анализа представляют собой стеклянные трубки с внутренним диаметром 0 9 см, толщиной стенок 1 5 - 2 мм, имеющие внизу стеклянный пористый фильтр и оканчивающиеся сверху шлифом для соединения с системой, подающей элюирующую жидкость; нижняя часть колонки заканчивается капиллярной трубкой с внутренним диаметром 0 8 мм. [15]