Cтраница 3
Примеры разнообразных геометрических форм, соответствующих различным числам упаковки, обобщены на рис. 5.6. Одноцепные ПАВ с большими концевыми группами ( головами) и NS 1 / 3 склонны к формированию регулярных или сферических мицелл. Ионные же ПАВ, как правило, формируют сферические мицеллы, но при высоких значениях ионной силы часто способны к формированию и цилиндрических мицелл, когда электростатическое отталкивание между концевыми группами ( головами) снижается. Мембранные липиды, например, лецитин, фосфатидилглицерин, сфингомелин и диалкилдиметиламмониевые галоиды ( ДДАБ) преимущественно образуют именно их. [31]
Мембраны клеток высших растений и дрожжей по ли-пидному составу во многом сходны с соответствующими мембранами клеток млекопитающих. Однако в них совсем нет сфингомиелина, а фосфатидилсерин присутствует лишь в следовых кол-вах. Главные стерины мембран растит, клеток-ситостерин и стигмастерин, мембран грибов и дрожжей-эргостерин и зимостерин. Мембраны хлороплас-тов фотосинтезирующих растений и синезеленых водорослей близки по своему липидному составу н содержат моно-и дигалактозилдиацилглицерины, 6-сульфохиновозилдиа-цилглицерин и фосфатидилглицерин. [32]
Детектирование было облегчено благодаря использованию радиоактивного фосфора. Радиоактивность измеряли непрерывно с помощью проточной ячейки. Были разделены ( в порядке уменьшения времени удерживания) следующие вещества: фосфатидная кислота, дифосфатидилглицерин, фосфатидилэтаноламин, фосфатидилглицерин, лизофосфатидилэта-ноламин, фосфатидилсерин, фосфатидилинозит, фосфатидилхолин, сфингомиелин, дифосфатидилинозит. Эти результаты демонстрируют большую эффективность ВЭЖХ при разделении фосфолипидов по сравнению с обычной хроматографией на колонках с кремниевой кислотой. При ВЭЖХ с использованием градиентного элюирования критическим фактором является скорость потока, которая должна быть достаточно высокой, чтобы не нарушался градиент, но в то же время не слишком высокой, чтобы не ухудшалось разрешение. Использование радиоактивного фосфора в качестве метки позволило обнаружить в исходном экстракте фосфолипидов минорные компоненты, которые не были обнаружены в исходном экстракте фосфолипидов с помощью обычных методов детектирования. [33]
Все перечисленные выше фосфатиды обнаружены как у растений, так и у животных. В естественных условиях фосфатидная кислота вряд ли встречается в свободном виде. Ее присутствие в экстрактах может быть обусловлено разрушением фосфатидил-холина и фосфатидилэтаноламина под действием фосфолипазы D ( см. стр. Фосфатиды служат важными составными частями клеточных мембран. Обычно они содержатся в хлоропластах, митохондриях и микросомах. Хлоропласта особенно богаты фосфатидил-глицерином. Быстрое обновление глицеридной части молекулы фосфатидилглицерина во время фотосинтеза позволяет предполагать, что этот фосфатид принимает участие в обмене веществ, а также служит структурным элементом хлоропластов. Бенсон, Уинтерменс и Уайзер [3] считают, что внутри хлоропласта фосфа-тидилглицерин может играть роль запасного углевода. [34]