Cтраница 2
Препараты саркомицина удается разделить на отдельные компоненты при хроматографировании на бумаге, обработанной 10 % - ным цитратным буфером рН 6 5 - 6 6 в различных органических растворителях. [16]
Если не обязательно достижение максимальной чувствительности реакции, то вместо 0 1 % - ного раствора нингидрина в цитратном буфере можно пользоваться 0 1 % - ным водным раствором нингидрина. [17]
Смесь NiCl2 и СоС12, содержащую равные известные количества обоих металлов, пропускают через колонку и затем элюируют раствором цитратного буфера. [18]
Смесь NiCl2 и СоС12, содержащую равные известные количества обоих металлов, пропускают через колонку и затем элюируют раствором цитратного буфера. Количества изолированных никеля и кобальта сравнивают с исходными количествами. [19]
Однако в настоящее время медь-бицинхонинатный метод после некоторой модификации [99] успешно применяется в системах, включающих ионообменную хроматографию нейтральных Сахаров в боратных буферах [81], кислых Сахаров в элюентах, содержащих ацетат-ион [95], и аминодезоксисахаров в цитратных буферах [223], причем во всех случаях предел детектирования не превышает 1 нмоль. Преимуществом этого аналитического метода при анализе аминодезоксисахаров в гидролизатах глико-протеинов является то, что в отличие от традиционного нингид-ринового метода, который предполагает детектирование любых соединений, содержащих свободную аминогруппу, в данном случае определяются исключительно аминодезоксисахара. [20]
Разделение проводят в камере для низковольтного электрофореза ( с. Кюветы заполняют цитратным буфером. Вырезают полосы хроматографической бумаги шириной 4 - 5 см и наносят на них тканевой экстракт и стандартные растворы нуклеотидов-свидетелей в количестве, соответствующем 0 1 - 0 15 мкмоль каждого нуклеотида Разделение проводят в течение 4 - 5 ч при градиенте напряжения 15 - 20 В / см и силе тока 0 5 мА на 1 см поперечного сечения бумажной полосы. Местоположение нуклеотидов идентифицируют в ультрахеми-скопе. [21]
Бумагу увлажняют цитратным буфером с рН 3 5 и подвешивают на стеклянной палочке таким образом, что концы оказываются погруженными в чашки с буферным раствором, в которые помещают электроды. После ионофореза бумагу высушивают и положение пятен устанавливают таким же образом, как описано выше для хроматограмм. Пример разделения, осуществленного этим методом, приведен на фиг. Метод ионофореза был усовершенствован Эдстремом [14, 52, 58] настолько, что теперь стало возможным разделять на волокнах целлюлозы нуклеотиды, полученные из нуклеиновых кислот одной клетки. [22]
Коллаген, как все фибриллярные белки, почти нерастворим в нейтраль ных растворах солей, слабых кислотах и щелочах. Коллаген, экстрагируемый цитратным буфером рН 4 0 из кожи различных животных, назван проколлагеном и наряду с тропоколлагеном, который экстрагируют нейтральными растворами солей, используется при исследовании физических и химических свойств коллагеновой молекулы. [23]
Очень важно сохранять атмосферу азота над испытуемым раствором во время реакции и титрования. III) в цитратном буфере, в который добавлена цинковая амальгама, затем, чтобы освободить от капелек кислоты - через воду, не содержащую воздуха, и, наконец, пропускают через преглевский поглотитель, присоединенный обратным концом для улавливания следов жидкости. Газоподводящая трубка оттянута в тонкий капилляр ( - 0 3 мм), который погружают в сосуд для титрования. [24]
В ионообменном методе разделения смесь хлоридов редкоземельных элементов подвергают бомбардировке нейтронами, вследствие чего образуются радиоактивные изотопы. Смесь затем растворяют, прибавляя в раствор цитратный буфер, и пропускают через колонку с катионитом. Колонку непрерывно промывают новыми порциями буферного раствора и вытекающую жидкость направляют мимо окна счетчика Гейгера в приемник, собирающий жидкость фракциями. [25]
Для отделения Ni в виде соединения с диметилглиоксимом трехкратную экстракцию хлороформом проводят из цитратного буфера с рН 8 5 - 9, приготовленного соответствующим образом. Водный слой промывают СС14, добавляют в него цитратный буфер, регулируют рН до слабощелочной реакции и экстрагируют изоамиловым спиртом в виде соединения с диэтилдитиокарбаминатом. [26]
Байер и Шенк [284] водорастворимые ДНФ-аминокислоты хроматографировали с цитратным буфером ( рН3 0) в термостатируемой при 30 С колонке со скоростью истечения 30 мл / ч и выделили для ос-кератинов 0 - ДНФ-серин, S-ДНФ-цистеин, № - ДНФ-лизин, 0 - ДНФ-тиро-зин; для шелкового волокна - 0 - ДНФ-серин, № - ДНФ-лизин, 0 - ДНФ-тирозин и для коллагена-0 - ДНФ-серин, 0 - ДНФ-окси-пролин, № - ДНФ-оксилизин. [27]
Исследуемую воду помещают в аппарат для отгона летучих аминов с паром, добавляют 70 г NaOH и отгоняют амины ( 150 - 160 мл отгона) в приемник, содержащий 15 мл IN хлористоводородной кислоты, добавляют 0 5 мл О IN H2SO4 и упаривают досуха. Остаток ( сульфаты оснований) растворяют в 5 мл цитратного буфера. Смешивают 2 мл этого раствора с 0 5 мл 0 1 % - ного раствора бромкрезолового пурпурного в этиловом спирте и взбалтывают 2 мин с 4 мл хлороформа. Смесь центрифугируют 15 мин, отбирают 3 5 мл хлороформного экстракта, добавляют 0 5 мл чистого хлороформа и измеряют оптическую плотность желтого раствора при 410 нм. Те же операции повторяют со стандартными растворами фенола для построения калибровочного графика. [28]
В мерную колбу на 100 мл наливают последовательно 10 мл цитратного буфера и 2 мл 4 мол. [29]
Было найдено, что в присутствии окиси цинка гидрохинон окисляется уже в темноте, а при освещении реакция окисления ускоряется. Однако пара-фенилендиамин окисляется только в чистой воде, в то время как цитратный буфер подавляет эту реакцию. [30]