Cтраница 1
Стерильные растения имеют белые или светло-зеленые пыльники, пустые, иногда содержащие малое количество смятой деформированной пыльцы, без пор. Полустерильные растения I типа имеют желтые, сморщенные пыльники, заполненные мелкой пыльцой с порами, которая не окрашивается ацето-кармином и нежизнеспособна. Полустерильные растения II типа имеют хорошо выполненные желтые пыльники, заполненные смесью мелкой пыльцы и нормальной, крупной фертильной пыльцы, хорошо окрашиваемой ацето-кармином. Пыльники хорошо растрескиваются и пылят. [1]
Обнаруженные стерильные растения в первый год свободно опыляются смесью пыльцы фертильных растений этой же популяции. Из семян, собранных с выделенных стерильных растений, на следующий год выращивают маточные корнеплоды или же для ускорения селекционного процесса в летне-осенний период - штеклинги. Выращенные маточные корнеплоды или штеклинги на следующий год высаживают на изолированной клумбе. [2]
Полностью стерильные растения не получены. [3]
Источниками стерильных растений у сахарной свеклы служат сорта и популяции. Частота встречаемости стерильных растений низкая, она колеблется от 0 003 % до 2 - 3 %, поэтому для выделения стерильных форм приходится обследовать большое количество семенников. Полностью стерильные растения в период цветения можно выделить и визуально, если имеется достаточный опыт. [4]
При обнаружении стерильного растения важно определить тип стерильности, для чего проводят соответствующий анализ. При этом необходимо учитывать особенности не только стерильного материала, но и привлеченных опылителей. В качестве последних желательно использовать формы, изученные генетически по исследуемому признаку. В частности, необходимо иметь представление о типе их цитоплазмы. [5]
Если при самоопылении стерильные растения не выщеп-ляются, работу по созданию восстановителя фертильности можно считать законченной. В случае наличия таковых самоопыление следует продолжить. [6]
В качестве источника таких стерильных растений нужно использойать полустерильную семью, выделяемую путем контролируемого скрещивания. Методика выделения и дальнейшего размножения такой семьи описана нами выше. [7]
Примем, что в этом случае стерильное растение имеет генотип Naa, то есть изучаемый признак кон - тролируется моногеннр. Так, например, если опылитель оказался гомозиготным по аллельному гену, то есть был NAA, то растения гибрида - будут с восстановленной фертильностью - NAa. [8]
Для стерилизации семян, используемых при выращивании стерильных растений, пригодны такие обычные антимикробные средства, как бромная вода ( 1 %), сулема ( HgCl2; 1 % - ный раствор в спирте), AgNO3 ( 0 05 %), гипохлорит кальция [ 1 % Са ( С1О) 2 ], успулун и др., которыми воздействуют в течение 5 - 30 мин. Перед этим семена следует обработать мылом или другим поверхностно-активным веществом, чтобы обеспечить полное смачивание поверхности. [9]
В таких семьях снова проводят анализирующие, , скрещивания стерильных растений с фертильными растениями соответствующего отцовского компонента. [10]
Среди нормальных, фертильных ( N) растений сахарной свеклы особый интерес представляют те, которые при скрещивании со стерильными растениями дают в потомстве только стерильные растения, то есть являются закрепителями стерильности. В работах по ЦМС у сахарной свеклы их еще называют растениями О типа. Выделение восстановителей фертильности у сахарной свеклы не требуется. [11]
Из сказанного следует, что клоповую методику можно применять только тогда, когда в анализирующих скрещиваниях в качестве материнского компонента используются стерильные растения одной генетической структуры. Если же для анализирующих скрещиваний стерильные растения берутся из полустерильной популяции, где они могут быть разной генетической структуры, использование клоповой методики не представляется возможным. Выделенные в этом случае закрепители стерильности будут также различны по своей генетической структуре. Клоны таких растений-закрепителей при переопылении между собой потеряют способность закреплять признак мужской стерильности в потомстве. Таким образом, при создании закрепителей стерильности в качестве анализаторов лучше использовать стерильные растения, одинаковые по своей генетической структуре. [12]
Из семей, полученных от скрещивания с полустерильными растениями I типа, большой практический интерес представляют те, в которых оказалось 75 % стерильных растений и 25 % полустерильных растений I типа. Такое соотношение растений разных типов стерильности в семьях указывает на то, что фертильные растения-опылители, взятые в этих парах анализирующих скрещиваний, гомозиготны по рецессивным генам стерильности. Выделенные таким путем растения-опылители являются закрепителями стерильности при скрещивании со всеми стерильными растениями, независимо от их генетической структуры. [13]
Среди нормальных, фертильных ( N) растений сахарной свеклы особый интерес представляют те, которые при скрещивании со стерильными растениями дают в потомстве только стерильные растения, то есть являются закрепителями стерильности. В работах по ЦМС у сахарной свеклы их еще называют растениями О типа. Выделение восстановителей фертильности у сахарной свеклы не требуется. [14]
Указанные авторы считают, что поверхность растения населена эпифитными бактериями, способными превращать триптофан в ИУК, причем этот процесс у бактерий идет в 10 раз активнее, чему стерильных растений. Если исследовать стерильные растения, то в них ауксинов содержится намного меньше, чем в нестерильных. При заражении их эпифитными бактериями количество ауксинов резко возрастает. В связи с этим, по мнению Либберта, следует с осторожностью относиться к экспериментам по биосинтезу индолов, проведенным на нестерильных растениях. [15]