Cтраница 3
Полученные растения первого беккросса ( SCi) и в том и в другом случае окажутся с восстановленной фертильностью. Подвергнув в дальнейшем самоопылению растения ВС, обнаружим, что в первом ( I) случае потомство будет полностью фертильным, а во втором ( II) будут выщепляться стерильные растения, что свидетельствует о наличии стерильной цитоплазмы и, следовательно, о ЦМС. [31]
В нашей стране работы по использованию ЦМС у лука были начаты в 1955 г. В отличие от других культур растения лука с ЦМС довольно часто встречаются в сортах и популяциях этой культуры. По данным Д. Д. Брежнева ( 1966), уже в 1960 г. стерильные растения лука были обнаружены в 20 сортах. Стерильные растения имеют генетическую структуру Smstns. По степени выраженности признака мужской стерильности растения лука разделяются на фертиль-ные, стерильные и промежуточные, или полустерильные. [32]
Источниками стерильных растений у сахарной свеклы служат сорта и популяции. Частота встречаемости стерильных растений низкая, она колеблется от 0 003 % до 2 - 3 %, поэтому для выделения стерильных форм приходится обследовать большое количество семенников. Полностью стерильные растения в период цветения можно выделить и визуально, если имеется достаточный опыт. [33]
Как уже отмечалось, стерильные формы растений лука довольно часто встречаются в сортах и популяциях этой культуры. Это позволяет создавать стерильные линии без использования многократных беккроссов с целью передачи признака стерильности другому сорту или линии. Выделяя стерильные растения из сорта. [34]
Схемы по выделению закрепителей стерильности и созданию мужско-стерильных линий у лука в настоящее время хорошо разработаны и описаны в работах Д. Д. Брежнева ( 1966), Ф. А. Ткаченко, А. И. Кононенко ( 1966), А. А. Казаковой ( 1966) и др; В первый семенной год выявляют растения с мужской стерильностью, которые скрещивают с большим количеством фер-тильных растений этого же сорта. Еще до цветения зонтики материнских и отцовских растений изолируют пергаментными изоляторами. Опыление стерильного растения проводят срезанным соцветием отцовской формы, помещая его под изолятор, стерильного растения. Для сохранения отцовского растения в чистоте на одном или двух соцветиях каждого отцовского растения проводят самоопыление. Для этого в изолятор помещают кисточку, с помощью которой проводят опыление через 1 - 2 дня в течение всего периода цветения. [35]
Из семей, полученных от скрещивания с полустерильными растениями I типа, большой практический интерес представляют те, в которых оказалось 75 % стерильных растений и 25 % полустерильных растений I типа. Такое соотношение растений разных типов стерильности в семьях указывает на то, что фертильные растения-опылители, взятые в этих парах анализирующих скрещиваний, гомозиготны по рецессивным генам стерильности. Выделенные таким путем растения-опылители являются закрепителями стерильности при скрещивании со всеми стерильными растениями, независимо от их генетической структуры. [36]
Схемы по выделению закрепителей стерильности и созданию мужско-стерильных линий у лука в настоящее время хорошо разработаны и описаны в работах Д. Д. Брежнева ( 1966), Ф. А. Ткаченко, А. И. Кононенко ( 1966), А. А. Казаковой ( 1966) и др; В первый семенной год выявляют растения с мужской стерильностью, которые скрещивают с большим количеством фер-тильных растений этого же сорта. Еще до цветения зонтики материнских и отцовских растений изолируют пергаментными изоляторами. Опыление стерильного растения проводят срезанным соцветием отцовской формы, помещая его под изолятор, стерильного растения. Для сохранения отцовского растения в чистоте на одном или двух соцветиях каждого отцовского растения проводят самоопыление. Для этого в изолятор помещают кисточку, с помощью которой проводят опыление через 1 - 2 дня в течение всего периода цветения. [37]
Из неморальных трав разрастаются зеленчук желтый и папоротники. Под пологом культур этого возраста обильно встречается вейник лесной, который в основном представлен недоразвитыми стерильными растениями - слабыми ( чахлыми) кустиками с укороченными побегами. Однако, учитывая то, что после рубки спелого искусственного ельника образуется вейниковый тип вырубки, мы предлагаем этот этап типа леса назвать ельником кислично-вейниковым. [38]
Характерной чертой, позволяющей также в определенной степени различать оба типа стерильности, является следующая особенность. Самоопыление растений FI в случае ядерной стерильности показывает в потомстве четкое расщепление на фертильные и стерильные растения в отношении 3: 1, тогда как при ЦМС расщепление носит более сложный характер. Последнее обусловлено большим числом генов, участвующих в формировании признака фертильность-стерильность, и зависит от генотипов стерильного растения и опылителя. [39]
В период цветения цитологическим методом ( методика будет описана ниже) у каждого растения определяют тип стерильности. Если данная работа проводится с чисто практической целью, достаточно выделить только стерильные растения по окраске пыльников. Выделенные растения этикетируют, а затем с помощью микроскопа уточняют тип стерильности. Стерильные растения свободно опыляются в пределах клумбы пыльцой своих сестринских полустерильных растений II типа. Семенное потомство собирают только со стерильных растений и после выращивания из него маточных корнеплодов или штеклингов на следующий год по такому же плану снова проводят массовый отбор стерильных растений. Семенные потомства с остальных растений клумбы ( полустерильные растения I типа и полустерильные растения II типа) выбраковывают и в дальнейшей работе не используют. [40]
Первый анализ растений материнского компонента на тип стерильности проводят цитологическим методом по описанной выше методике до начала цветения. Перед началом анализа все растения материнского компонента на каждой клумбе нумеруют е помощью пергаментных этикеток. Среди семей, полученных от скрещивания со стерильными растениями, практический интерес представляют те, у которых все растения окажутся стерильными. Кроме того, необходимо отобрать одну семью, у которой оказалось 50 % стерильных растений, 25 % полустерильных растений I типа и 25 % полустерильных растений II типа. Растения отцовского компонента и полустерильные растения I типа с такой клумбы выбраковывают до начала цветения. В дальнейшем размножение такой полустерильной семьи ежегодно должно проводиться на изолированной клумбе путем массового отбора стерильных растений. [41]
Те-хашкая форма цятоплазменной мужской стерильности ( Tms) легко вводится возвратным скрещиванием. Плодовитость восстанавливается или генетически, или смешиванием гибридных семян с семенами, обладающими нормальной ( N) цитоплазмой. Нормальные растения в смешанном посеве образуют достаточно пыльцы для себя и для соседних стерильных растений. В 1969 и 1970 гг. в США появился новый штамм этого гриба, и последствия достаточно хорошо известны. Кукуруза с нормальной цитоплазмой достаточно устойчива против нового штамма Т гриба Я. [42]
При создании стерильных аналогов линии или сорта рекомендуется прежде всего исследовать этот материал на реакцию ЦМС. В качестве анализаторов комбинационной ценности целесообразно брать хорошие линии и сильные межлинейные гибриды. В ходе насыщающих скрещиваний желательно провести самоопыление опылителя с тем, чтобы попытаться выделить и закрепители стерильности и восстановители фертильности. В процессе насыщения желательно, начиная со второго беккросса, подбирать для дальнейших беккроссов стерильные растения, наиболее близкие по фенотипу к опылителю. После проведения серии беккроссов по-лучаю т стерильный аналог опылителя, фенотипически идентичный с ним. [43]
В качестве источника таких стерильных растений нужно использойать полустерильную семью, выделяемую путем контролируемого скрещивания. Методика выделения и дальнейшего размножения такой семьи описана нами выше. Для этого на клумбе, где размножается полустерильная популяция, необходимо провести 10 - 15 контролируемых парных скрещиваний стерильных растений с полустерильными растениями II типа. По описанной выше методике такая полустерильная семья размножается до необходимого объема, и вся работа по созданию линий - - закрепителей стерильности в дальнейшем ведется на основе стерильных анализаторов, взятых только из этой одной полустерильной семьи. Использование такого источника стерильных анализаторов позволяет применять кленовую методику, свести до минимума ( 2 - 3 м) пространственную изоляцию при высадке потомств от парных анализирующих скрещиваний, получить закрепители стерильности, одинаковые по своей генетической структуре, что значительно облегчает дальнейшую селекционную и семеноводческую работу с ними. [44]
В период цветения цитологическим методом ( методика будет описана ниже) у каждого растения определяют тип стерильности. Если данная работа проводится с чисто практической целью, достаточно выделить только стерильные растения по окраске пыльников. Выделенные растения этикетируют, а затем с помощью микроскопа уточняют тип стерильности. Стерильные растения свободно опыляются в пределах клумбы пыльцой своих сестринских полустерильных растений II типа. Семенное потомство собирают только со стерильных растений и после выращивания из него маточных корнеплодов или штеклингов на следующий год по такому же плану снова проводят массовый отбор стерильных растений. Семенные потомства с остальных растений клумбы ( полустерильные растения I типа и полустерильные растения II типа) выбраковывают и в дальнейшей работе не используют. [45]