Cтраница 2
Проведение такой работы позволяет из самоопыленного потомства фертильного растения с генотипом NMsms выделить необходимые растения с генотипом Nmsms; при этом следует иметь в виду, что если в потомстве самоопыленного ( в первом году) растения-опылителя будут обнаружены стерильные растения, такой опылитель непригоден для дальнейшей работы. [16]
Работы, проведенные разными авторами с различными растениями ( табак, мышиный горошек, мать-и-мачеха, подорожник, кукуруза, сосны обыкновенная и смолистая, пихты белая и сибирская и др.) показали, что в зоне влияния заводов, автомобильных дорог увеличивается число стерильных растений. [17]
Источники возникновения ЦМС могут быть различными. Стерильные растения встречаются непосредственно в сортах-популяциях. Появляются они также в результате скрещивания растений в пределах одного вида. В этом случае в гибридном растении обеспечивается сочетание стерильной цитоплазмы одного родительского компонента с рецессивными генами другого. Реже ЦМС возникает как результат отдаленной гибридизации. [18]
Указанные авторы считают, что поверхность растения населена эпифитными бактериями, способными превращать триптофан в ИУК, причем этот процесс у бактерий идет в 10 раз активнее, чему стерильных растений. Если исследовать стерильные растения, то в них ауксинов содержится намного меньше, чем в нестерильных. При заражении их эпифитными бактериями количество ауксинов резко возрастает. В связи с этим, по мнению Либберта, следует с осторожностью относиться к экспериментам по биосинтезу индолов, проведенным на нестерильных растениях. [19]
Источниками стерильных растений у сахарной свеклы служат сорта и популяции. Частота встречаемости стерильных растений низкая, она колеблется от 0 003 % до 2 - 3 %, поэтому для выделения стерильных форм приходится обследовать большое количество семенников. Полностью стерильные растения в период цветения можно выделить и визуально, если имеется достаточный опыт. [20]
По степени выраженности признака выделяют стерильные растения и полустерильные растения I и II типов. [21]
Из сказанного следует, что клоповую методику можно применять только тогда, когда в анализирующих скрещиваниях в качестве материнского компонента используются стерильные растения одной генетической структуры. Если же для анализирующих скрещиваний стерильные растения берутся из полустерильной популяции, где они могут быть разной генетической структуры, использование клоповой методики не представляется возможным. Выделенные в этом случае закрепители стерильности будут также различны по своей генетической структуре. Клоны таких растений-закрепителей при переопылении между собой потеряют способность закреплять признак мужской стерильности в потомстве. Таким образом, при создании закрепителей стерильности в качестве анализаторов лучше использовать стерильные растения, одинаковые по своей генетической структуре. [22]
Обнаруженные стерильные растения в первый год свободно опыляются смесью пыльцы фертильных растений этой же популяции. Из семян, собранных с выделенных стерильных растений, на следующий год выращивают маточные корнеплоды или же для ускорения селекционного процесса в летне-осенний период - штеклинги. Выращенные маточные корнеплоды или штеклинги на следующий год высаживают на изолированной клумбе. [23]
Во второй семенной год проводят проверку семей по признаку стерильности. Все семьи, имеющие 100 % стерильных растений, отбирают и повторно опыляют теми отцовскими растениями, которые выявились как закрепители стерильности. Отцовские растения размножаются в пределах семьи. На третий семенной год на изолированных участках высаживают чередующимися рядами семьи от материнских растений со стерильной пыльцой и отцовские опылители. Семена с этих рядов собирают раздельно: с материнских растений - семена стерильной линии, а с отцовских - семена отца-опылителя. Такое поддержание, стерильной линии продолжается ежегодно. [24]
Однако в практике может быть такой случай, когда на третий год работы ( анализ семей от анализирующих скрещиваний) не удается выделить фертильные растения с генотипом Nmsms. В каждой такой семье вторично проводят парные анализирующие скрещивания стерильных растений с фертильными опылителями из этой же семьи. [25]
В период цветения цитологическим методом ( методика будет описана ниже) у каждого растения определяют тип стерильности. Если данная работа проводится с чисто практической целью, достаточно выделить только стерильные растения по окраске пыльников. Выделенные растения этикетируют, а затем с помощью микроскопа уточняют тип стерильности. Стерильные растения свободно опыляются в пределах клумбы пыльцой своих сестринских полустерильных растений II типа. Семенное потомство собирают только со стерильных растений и после выращивания из него маточных корнеплодов или штеклингов на следующий год по такому же плану снова проводят массовый отбор стерильных растений. Семенные потомства с остальных растений клумбы ( полустерильные растения I типа и полустерильные растения II типа) выбраковывают и в дальнейшей работе не используют. [26]
В нашей стране работы по использованию ЦМС у лука были начаты в 1955 г. В отличие от других культур растения лука с ЦМС довольно часто встречаются в сортах и популяциях этой культуры. По данным Д. Д. Брежнева ( 1966), уже в 1960 г. стерильные растения лука были обнаружены в 20 сортах. Стерильные растения имеют генетическую структуру Smstns. По степени выраженности признака мужской стерильности растения лука разделяются на фертиль-ные, стерильные и промежуточные, или полустерильные. [27]
Характерной чертой, позволяющей также в определенной степени различать оба типа стерильности, является следующая особенность. Самоопыление растений FI в случае ядерной стерильности показывает в потомстве четкое расщепление на фертильные и стерильные растения в отношении 3: 1, тогда как при ЦМС расщепление носит более сложный характер. Последнее обусловлено большим числом генов, участвующих в формировании признака фертильность-стерильность, и зависит от генотипов стерильного растения и опылителя. [28]
Новые восстановители фертильности могут быть получены путем самоопыления гибридов, выведенных в результате скрещивания линий-восстановителей с фертильными формами из линий и сортов, интересующих селекционера. Потомство от самоопыления необходимо исследовать на восстановительную способность, вовлекая его в анализирующие скрещивания со стерильными растениями. [29]
Однако процент фертильных растений - закрепителей стерильности в сортах-популяциях сахарной свеклы небольшой. Вторая причина, осложняющая работу по чюзданию линий - закрепителей стерильности, заключается в том, что фенотипически одинаковые стерильные растения могут быть генетически различными. [30]