Cтраница 4
Принципы работы с сорго по использованию в селекции ЦМС в основном аналогичны таковым у кукурузы. Стерильные аналоги также создают путем возвратных насыщающих скрещиваний. Уже после трехкратных насыщающих скрещиваний стерильную форму вовлекают в анализирующие скрещивания с фертильными образцами с целью изучения комбинационной ценности. Очень часто насыщение ограничивают четырьмя беккрос-сами. Однако, если в дальнейшем наблюдаются случаи выщеп-ления фертильных форм из стерильных растений, насыщение продолжают. Конечно, это целиком связано с генетическими особенностями используемого в работе материала. [46]
Из сказанного следует, что клоповую методику можно применять только тогда, когда в анализирующих скрещиваниях в качестве материнского компонента используются стерильные растения одной генетической структуры. Если же для анализирующих скрещиваний стерильные растения берутся из полустерильной популяции, где они могут быть разной генетической структуры, использование клоповой методики не представляется возможным. Выделенные в этом случае закрепители стерильности будут также различны по своей генетической структуре. Клоны таких растений-закрепителей при переопылении между собой потеряют способность закреплять признак мужской стерильности в потомстве. Таким образом, при создании закрепителей стерильности в качестве анализаторов лучше использовать стерильные растения, одинаковые по своей генетической структуре. [47]
Первый анализ растений материнского компонента на тип стерильности проводят цитологическим методом по описанной выше методике до начала цветения. Перед началом анализа все растения материнского компонента на каждой клумбе нумеруют е помощью пергаментных этикеток. Среди семей, полученных от скрещивания со стерильными растениями, практический интерес представляют те, у которых все растения окажутся стерильными. Кроме того, необходимо отобрать одну семью, у которой оказалось 50 % стерильных растений, 25 % полустерильных растений I типа и 25 % полустерильных растений II типа. Растения отцовского компонента и полустерильные растения I типа с такой клумбы выбраковывают до начала цветения. В дальнейшем размножение такой полустерильной семьи ежегодно должно проводиться на изолированной клумбе путем массового отбора стерильных растений. [48]
Как уже отмечалось, стерильные формы растений лука довольно часто встречаются в сортах и популяциях этой культуры. Это позволяет создавать стерильные линии без использования многократных беккроссов с целью передачи признака стерильности другому сорту или линии. Выделяя стерильные растения из сорта. Поэтому к использованию насыщающих скрещиваний у лука прибегают лишь в тех случаях, когда поиски стерильных растений среди посевов интересующего сорта окажутся безрезультатными. [49]
В период цветения цитологическим методом ( методика будет описана ниже) у каждого растения определяют тип стерильности. Если данная работа проводится с чисто практической целью, достаточно выделить только стерильные растения по окраске пыльников. Выделенные растения этикетируют, а затем с помощью микроскопа уточняют тип стерильности. Стерильные растения свободно опыляются в пределах клумбы пыльцой своих сестринских полустерильных растений II типа. Семенное потомство собирают только со стерильных растений и после выращивания из него маточных корнеплодов или штеклингов на следующий год по такому же плану снова проводят массовый отбор стерильных растений. Семенные потомства с остальных растений клумбы ( полустерильные растения I типа и полустерильные растения II типа) выбраковывают и в дальнейшей работе не используют. [50]